Thai Propolis Extract as a Root Canal Medication against Enterococcus faecalis Infection
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินประสิทธิภาพของสารสกัดพรอพอลิสไทยเปรียบเทียบกับแคลเซียมไฮดรอกไซด์ต่อการต้านการติดเชื้อเอ็นเทอโรคอคคัสฟีคาลิสเมื่อใช้เป็นยาใส่ในคลองรากฟัน ฟันกรามน้อยล่างจำนวนเจ็ดสิบสองซี่ถูกทำให้ติดเชื้อเอ็นเทอโรคอคคัสฟีคาลิส ฟันหกซี่ใช้น้ำเกลือเป็นยาใส่ในคลองรากฟัน ฟันสี่ซี่ตรวจการแทรกซึมของแบคทีเรียด้วยกล้องอิเล็กตรอนไมโครสโคปชนิดส่องกราดฟันอีก 162 ซี่แบ่งเป็นกลุ่มทดลองหกกลุ่ม กลุ่มละ 18 ซี่ ใส่ยาสามชนิด คือ สารสกัดพรอพอลิสไทย แคลเซียมไฮดรอกไซด์และแคลเซียม
ไฮดรอกไซด์ผสมสารสกัดพรอพอลิสไทย โดยใส่ยาเป็นเวลา 2 หรือ 7 วัน นำผงรากฟันที่กรอได้ไปประเมินปริมาณแบคทีเรียมีชีวิตที่หลงเหลือผลการศึกษาพบว่าสารสกัดพรอพอลิสไทยกำจัดเชื้อเอ็นเทอโรคอคคัสฟีคาลิสได้มากที่สุดในวันที่ 2 หลังจากใส่ยา (p<0.001) แต่กำจัดเชื้อได้น้อยกว่าสารสกัดพรอพอลิสไทยผสมแคลเซียมไฮดรอกไซด์ และแคลเซียมไฮดรอกไซด์ในวันที่ 7 (p<0.001) โดยทั้งวันที่ 2 และ 7 สารสกัดพรอพอลิสไทยผสมแคลเซียมไฮดรอกไซด์ให้ผลกำจัดเชื้อไม่แตกต่างกับแคลเซียมไฮดรอกไซด์
Article Details
บทความ ข้อมูล เนื้อหา รูปภาพ ฯลฯ ทีได้รับการลงตีพิมพ์ในวิทยาสารทันตแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่นถือเป็นลิขสิทธิ์เฉพาะของคณะทันตแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใด ๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษร จากคณะทันตแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่นก่อนเท่านั้น
เอกสารอ้างอิง
2. Figdor D, Davies JK, Sundqvist G. Starvation survival, growth and recovery of Enterococcus faecalis in human serum. Oral Microbiol Immunol 2003;18:234-9.
3. Han GY, Park SH, Yoon TC. Antimicrobial activity of Ca(OH)2 containing pastes with Enterococcus faecalis in vitro. J Endod 2001;27:328-32.
4. Evans M, Davies JK, Sundqvist G, Figdor D. Mechanisms involved in the resistance of Enterococcus faecalis to calcium hydroxide. Int Endod J 2002;35:221-8.
5. Sukawat C, Srisuwan T. A comparison of the antimicrobial efficacy of three calcium hydroxide formulations on human dentin infected with Enterococcus faecalis. J Endod 2002;28:102-4.
6. Sjögren U, Figdor D, Spangberg L, Sundqvist G. The antimicrobial effect of calcium hydroxide as a short-term intracanal dressing. Int Endod J 1991; 24:119-25.
7. Andreasen JO, Farik B, Munksgaard EC. Long-term calcium hydroxide as a root canal dressing may increase risk of root fracture. Dent Traumatol 2002;18:134-7.
8. Siqueira JF Jr, Loped HP. Mechanisms of antimicrobial activity of calcium hydroxide: a critical review. Int Endod J 1999;32:361-9.
9. Estrela C, Pécora J, Souza-Neto MD, Estrela C, Bammann LL. Effect of vehicle on antimicrobial properties of calcium hydroxide paste. Braz Dent J 1999;10:63-72.
10. Sahamanta CG, Gabriel AS, Isela FC, Laura VFG, Hugo MZ. Antimicrobial activity with mixture of calcium hydroxide and propolis. Int J Pharm Bio Sci 2011;2:203-10.
11. Ghisalberti E. Propolis:a review. Bee World 1979;60:59-84.
12. Uzel A, Sorkun K, Öncag Ö, Cogulu D, Gencay Ö, Salih B. Chemical compositions and antimicrobial activities of four different Anatolian propolis samples. Microbiol Res 2005;160:189-95.
13. Awawdeh L, Al-Beitawi M, Hammad M. Effectiveness of propolis and calcium hydroxide as a short-term intracanal medicament against Enterococcus faecalis: a laboratory study. Aus Endod J 2009;35:52-8.
14. Kayaoglu G, Ömurlu H, Akca G, Gurel M, Gencay Ö, Sorkun K, Salih B. Antibacterial activity of propolis versus conventional endodontic disinfectants against Enterococcus faecalis in infected dentinal tubules. J Endod 2011;37:376-81.
15. Samaksamarn T, Chailertvanitkul P, Laopaiboon M, Kaentip P, Yim-art P, Sheewakumnuan N. Antibacterial properties of propolis extracted by agar well diffusion method. Khon Kaen
Dent J 2012;15:21-8.
16. de Rezende GP, da Costa LR, Pimenta FC, Baroni DA. In vitro antimicrobial activity of endodontic pastes with propolis extracts and calcium hydroxide: a preliminary study. Braz Dent J 2008;19:301-5.
17. Prueksakorn A, Puasiri S, Ruangsri S, Makeudom A,Sastraruji T, Krisanapakornkit S, chailertvanitkul P. The preservative effect of Thai propolis extract on the viability of human periodontal ligament cells. Dent Traumatol 2016;32:495-501.
18. Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am J Clin Pathol 1966;45:493-6.
19. Ferreira FB, Torres SA, Rosa OP, Ferreira CM, Garcia RB, Marcucci MC, Gomes BP. Antimicrobial effect of propolis and other substances against selected endodontic pathogens. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2007;104:709-16.
20. Jafarzadeh Kashi TS , Kermanshahi RK, Erfand M, Dastjerdie EV, Rezaeia Y, Tabatabaei FS. Evaluating the in-vitro antibacterial effect of Iranian propolis on oral microorganisms. Iran J Pharm Res 2011;10:363-8.
21 Chailertvanitkul P, Namsirikul T, Damrongrungruang T, Peerapattana J. Phenolic and flavonoids contents and antibacterial activity of ethanolic extract of propolis. Isan J
Pharm Sci 2017;13:59-67
22. Kumazawa S, Hamasaka T, Nakayama T. Antioxidant
activity of propolis of various geographic origins. Food Chem
2004;84:329-39.
23. Madhubala MM, Srinivasan N, Ahamed S. Comparative
evaluation of propolis and triantibiotic mixture as an
intracanal medicament against Enterococcus faecalis.
J Endod 2011;37:1287-9.
24. Schieber A, Keller P, Carle R. Determination of phenolic
acids and flavonoids of apple and pear by high-performance
liquid chromatography. J Chromatogr A 2001;910:265-73.
25. Love RM. Regional variation in root dentinal tubule infection
by Streptococcus gordonii. J Endod 1996;22:290-3.
