การเปรียบเทียบฤทธิ์ความเป็นพิษต่อเซลล์มะเร็งโรคระบบทางเดินอาหารของสารสกัดผักปลังขาวและผักปลังแดง

Main Article Content

ญาณิศา รวยทรัพย์
ศรีโสภา เรืองหนู
อรุณพร อิฐรัตน์

บทคัดย่อ

บทนำและวัตถุประสงค์: ผักปลังเป็นสมุนไพรพื้นบ้านที่พบได้ทั่วไปใช้เป็นยาสมุนไพรและรับประทานเป็นอาหาร ในประเทศไทยพบได้สองชนิด คือ ผักปลังขาว (Basella alba L.) และผักปลังแดง (Basella rubra L.) มีสรรพคุณเป็นยาระบาย ป้องกันอาการท้องผูกและรักษาแผลในกระเพาะอาหาร การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาและเปรียบเทียบฤทธิ์ความเป็นพิษต่อเซลล์มะเร็งโรคระบบทางเดินอาหารของสารสกัดผักปลังขาวและผักปลังแดง


วิธีการศึกษา: ทำการสกัดผักปลังขาวและผักปลังแดงสดโดยการหมักด้วยเอทานอลร้อยละ 95 จากนั้นสกัดแยกด้วยวิธี partition extraction แล้วนำไปทดสอบฤทธิ์ความเป็นพิษต่อเซลล์มะเร็งโรคระบบทางเดินอาหาร ได้แก่ เซลล์มะเร็งช่องปากชนิด KB เซลล์มะเร็งกระเพาะอาหารชนิด KATO III เซลล์มะเร็งลำไส้ใหญ่ชนิด SW480 และ LS174T เซลล์มะเร็งท่อน้ำดีชนิด KKU-M156 เซลล์มะเร็งตับชนิด Hep G2 และเซลล์ปกติชนิด HaCaT โดยวิธี SRB assay


ผลการศึกษา: สารสกัดหยาบผักปลังขาวสามารถยับยั้งการเจริญเติบโตของเซลล์มะเร็งโรคระบบทางเดินอาหารทุกเซลล์ได้มากกว่าผักปลังแดง โดยสารสกัดหยาบผักปลังขาวมีฤทธิ์ความเป็นพิษต่อเซลล์มะเร็ง KB, KATO III, SW480 และ KKU-M156 โดยมีค่า IC50 เท่ากับ 39.31, 33.82, 31.54 และ 33.79 µg/mL ตามลำดับ ในขณะที่เซลล์ LS 174T และ Hep G2 มีค่า IC50 เท่ากับ 63.06 และ 59.63 µg/mL ซึ่งสารสกัดหยาบผักปลังขาวแสดงค่า SI ที่ดีต่อเซลล์มะเร็ง KB, KATO III, SW480 และ KKU-M156 มีค่า SI เท่ากับ 2.39, 2.78, 2.98 และ 2.79 ตามลำดับ ผลการทดสอบของ fraction พบว่า fraction ชั้นคลอโรฟอร์มผสมเอททิลอะซีเตรตของสารสกัดหยาบผักปลังขาวมีค่า IC50 ต่อเซลล์มะเร็งทุกชนิดดีที่สุด ยกเว้นต่อเซลล์ SW480 เมื่อเทียบกันระหว่างกลุ่มเซลล์ KATO III, SW480 และ KKU-M156 พบว่าค่า IC50 ของ fraction ชั้นคลอโรฟอร์มผสมเอททิลอะซีเตรตของสารสกัดหยาบผักปลังขาวไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญจาก fraction ชั้นคลอโรฟอร์มของสารสกัดหยาบผักปลังแดง และเมื่อคำนวณค่า SI พบว่า fraction ชั้นคลอโรฟอร์มของสารสกัดหยาบผักปลังแดงมีค่า SI สูงที่สุดต่อเซลล์มะเร็ง KATO III, SW480, LS 174T และ KKU-M156 เท่ากับ 7.81, 9.30, 2.05 และ 4.22 ตามลำดับ


อภิปรายผล: สารสกัดหยาบจากผักปลังขาวแบบสดที่หมักด้วยเอทานอลร้อยละ 95 มีศักยภาพในการต้านเซลล์มะเร็งในระบบทางเดินอาหารมากกว่าสารสกัดหยาบจากผักปลังแดงแบบสดที่หมักด้วยเอทานอลร้อยละ 95 โดยมีค่า IC50 ต่อเซลล์มะเร็ง KB, KATO III, SW480 และ KKU-M156 ในระดับปานกลางตามข้อกำหนดของ NCI แต่เมื่อทำการแยกสกัดต่อด้วยวิธี partition extraction พบว่า fraction ชั้นคลอโรฟอร์มของสารสกัดหยาบผักปลังแดงมีศักยภาพในการต้านเซลล์มะเร็ง KATO III, SW480, LS 174T และ KKU-M156 มากกว่าประมาณ 3-6 เท่าของสารสกัดหยาบผักปลังขาว


ข้อสรุปและข้อเสนอแนะ: ผักปลังแดงแบบสดที่สกัดด้วยเอทานอลร้อยละ 95 และทำการแยกสกัดต่อด้วยคลอโรฟอร์มมีศักยภาพในการต้านเซลล์มะเร็งโรคระบบทางเดินอาหารที่ดีที่สุด โดยฤทธิ์ที่แตกต่างกันอาจเนื่องจากสารสำคัญที่เป็นองค์ประกอบ ดังนั้นจึงควรมีการศึกษาวิเคราะห์หาสารสำคัญที่ออกฤทธิ์ การทดสอบในสัตว์ทดลองและการทดสอบความเป็นพิษเพื่อพัฒนาเป็นผลิตภัณฑ์ในอนาคต

Article Details

ประเภทบทความ
Original Articles
ประวัติผู้แต่ง

ศรีโสภา เรืองหนู, สถานการแพทย์แผนไทยประยุกต์ คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

สถานการแพทย์แผนไทยประยุกต์ คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

Department of Applied Thai Traditional Medicine, Faculty of Medicine, Thammasat University, Klong Nueng Sub-District, Klong Luang District, Pathum Thani 12120, Thailand

เอกสารอ้างอิง

World Health Organization. Thailand Source: Globocan 2020. [Internet]. 2021 [cited 2021 Mar 5]; Available from: https://gco.iarc.fr/today/data/factsheets/populations/764-thailand-fact-sheets.pdf.

National Cancer Institute. Hospital-based cancer registry 2021 [Internet]. 2022 [cited 2023 Jan 17]; Available from: https://www.nci.go.th/e_book/hosbased_2564/index.html.

Arnold M, Abnet CC, Neale RE, Vignat J, Giovannucci EL, McGlynn KA, Bray F. Global burden of 5 major types of gastrointestinal cancer. Gastroenterology. 2020;159(1):335-49.e15.

American Cancer Society. Colorectal cancer. [Internet]. 2021 [cited 2021 Jan 12]; Available from: https://www.cancer.org/cancer/colon-rectal-cancer.html.

Chatchawal C, Nualkaew N. Ceylon Spinach (L.), a nutritious local vegetable with potential for health food production. J Thai Trad Alt Med. 2009;7(2-3):197–201. (in Thai)

Kumar V, Bhat Z, Kumar D, Khan N, Chashoo IA, Ara I. Gastroprotective effect of leaf extracts of Basella alba var. alba against experimental gastric ulcers in rats. Rev. Bras. Farmacogn. 2012;22:657–62.

Jaiswal SK, Rao CV. Evaluation of standardized fractions of Basella alba leaves as gastroprotective activity on ulcerated rats. Orient Pharm Exp Med. 2016;16:339–47.

Deshmukh S, Gaikwad D. A review of the taxonomy, ethnobotany, phytochemistry and pharmacology of Basella alba (BASELLACEAE). J Appl Pharm Sci. 2014;4(1):153–65.

Glassgen WE, Metzger JW, Heuer S, Strack D. Betacyanins from fruits of Basella rubra. Phytochemistry. 1993;33(6):1525–7.

Kumar S, Prasad A, Iyer S, Vaidya S. Systematic pharmacognostical, phytochemical and pharmacological review on an ethno medicinal plant, Basella alba L. J. Pharmacogn. Phytotherapy. 2013;5(4):53–8.

Murakami T, Hirano K, Yoshikawa M. Medicinal foodstuffs. XXIII. 1) structures of new oleanane-type triterpene oligoglycosides, basellasaponins A, B, C, and D, from the fresh aerial parts of Basella rubra L. Chem Pharm Bull. 2001;49(6):776–9.

Abotaleb M, Liskova A, Kubatka P, Büsselberg D. Therapeutic potential of plant phenolic acids in the treatment of cancer. Biomolecules. 2020;10(2):221.

Abotaleb M, Samuel SM, Varghese E, Varghese S, Kubatka P, Liskova A, Busselberg D. Flavonoids in cancer and apoptosis. Cancers. 2018;11(1):28.

Kanner J, Harel S, Granit R. Betalains a new class of dietary cationized antioxidants. J. Agric. Food Chem. 2001;49(11):5178–85

Kopustinskiene DM, Jakstas V, Savickas A, Bernatoniene J. Flavonoids as anticancer agents. Nutrients. 2020;12(2):457.

Olajire A, Azeez L. Total antioxidant activity, phenolic, flavonoid and ascorbic acid contents of Nigerian vegetables. Afr. J. Food Sci.Technol. 2011;2(2):22-9.

Oluwakemi OA, Akindele AJ, Bosede FS. Ascorbic acid, total phenolic, flavonoid and antioxidant activity of two cultivars of Basella alba. Food Sci. Technol. 2017;5(4):92–6.

Maisuthisakul P, Pasuk S, Ritthiruangdej P. Relationship between antioxidant properties and chemical composition of some Thai plants. J. Food Compos. Anal. 2008;21(3):229–40.

Venkatalakshmi P, Senthamaraiselvi V. Anti-ulcer effect of Basella alba leaf extract in aspirin induced albino rats. Int J Pharm Sci Res. 2012;3(8):2539.

Kumar BR, Anupam A, Manchikanti P, Rameshbabu AP, Dasgupta S, Dhara S. Identification and characterization of bioactive phenolic constituents, anti-proliferative, and anti-angiogenic activity of stem extracts of Basella alba and rubra. J Food Sci Technol. 2018;55:1675-84.

Pal K. Cell growth inhibition and apoptosis by extract of Basella alba plant on U937 cells. World J. Pharm. Pharm. Sci. 2015;5:1251–61.

Islam MS, Rahi MS, Jahangir CA, Rahman MH, Jerin I, Amin R, Hoque KMF, Reza MA. In vivo anticancer activity of Basella alba leaf and seed extracts against Ehrlich’s ascites carcinoma (EAC) cell line. Evid Based Complement Alternat Med. 2018;2018.

Rodda R, Kota A, Sindhuri T, Kumar SA, Gnananath K. Investigation on anti-inflammatory property of Basella alba linn leaf extract. Int J Pharm Pharm Sci. 2012;4(1):452-4.

Haneefa MKP, Abraham A, Saraswathi R, Mohanta GP, Nayar C. Formulation and Evaluation of Herbal Gel of Basella alba for wound healing activity. J. Pharm. Sci. & Res. 2010;4(1):1642-8.

Skehan P, Storeng R, Scudiero D, Monks A, McMahon J, Vistica D, Warren JT, Bokesch H, Kenney S, Boyd MR. New colorimetric cytotoxicity assay for anticancer-drug screening. J Natl Cancer Inst. 1990;82(13):1107–12.

Itharat A, Houghton PJ, Eno-Amooquaye E, Burke P, Sampson JH, Raman A. In vitro cytotoxic activity of Thai medicinal plants used traditionally to treat cancer. J Ethnopharmacol. 2004;90(1):33–8.

Suffness M. Assays related to cancer drug discovery. Methods in plant biochemistry: assays for bioactivity. 1990;6:71–133.

Peña-Morán OA, Villarreal ML, Álvarez-Berber L, Meneses-Acosta A, Rodríguez-López V. Cytotoxicity, post-treatment recovery, and selectivity analysis of naturally occurring podophyllotoxins from Bursera fagaroides var. fagaroides on breast cancer cell lines. Molecules. 2016;21(8):1013.

Indrayanto G, Putra GS, Suhud F. Validation of in-vitro bioassay methods: Application in herbal drug research. Profiles of Drug Substances, Excipients and Related Methodology. 2021;46:273-307.

Kilari BP, Kotakadi VS, Penchalaneni J. Anti-proliferative and apoptotic effects of Basella rubra (L.) against 1, 2-dimethyl hydrazine-induced colon carcinogenesis in rats. J. Asian Pac J Cancer Prev. 2016;17(1):73–80.

Lyu JI, Ryu J, Seo KS, Kang KY, Park SH, Ha TH, Ahn JW, Kang SY. Comparative study on phenolic compounds and antioxidant activities of hop (Humulus lupulus L.) strobile extracts. Plants. 2022;11(1):135.