ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและยับยั้งเอนไซม์ HMG-CoA Reductase ของสารสกัด จากใบส้มป่อยและฤทธิ์ลดไขมันในเลือดในหนูแรทที่มีไขมันในเลือดสูง
Main Article Content
บทคัดย่อ
ไขมันในเลือดสูงเป็นปัจจัยสำคัญของการเกิดหลอดเลือดแดงแข็ง ซึ่งเป็นสาเหตุสำคัญของการเป็นโรคหัวใจขาดเลือดและโรคหลอดเลือดของสมอง ใบส้มป่อยมีคุณสมบัติต้านออกซิเดชันจึงอาจช่วยลดความเสี่ยงของการเกิดภาวะหลอดเลือดแดงแข็งได้ อย่างไรก็ตาม ยังขาดข้อมูลทางวิทยาศาสตร์ที่สนับสนุนคำกล่าวอ้างดังกล่าว งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ยับยั้งการสร้างคอเลสเตอรอลของสารสกัดใบส้มป่อยในหลอดทดลอง และฤทธิ์ลดไขมันในหนูแรทที่เหนี่ยวนำให้มีภาวะไขมันในเลือดสูงโดยให้อาหารที่มีคอเลสเตอรอลสูง พบว่าสารสกัดด้วยน้ำของใบส้มป่อยสามารถต้านอนุมูลอิสระด้วยการดักจับอนุมูลซุปเปอร์ออกไซด์ (IC50 เท่ากับ 44.90 ± 4.17 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร) และมีฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ 3-hydroxy-3-methylglutaryl CoA reductase (HMG-CoA reductase) (IC50 เท่ากับ 71.38 ± 5.80 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร) ส่วนการศึกษาในหนูแรท พบว่าเมื่อให้สารสกัดส้มป่อยขนาด 200-800 มิลลิกรัม/กิโลกรัม/วัน หรืออะทอร์วาสแตตินขนาด 20 มิลลิกรัม/กิโลกรัม/วัน พร้อมกับอาหารไขมันสูงทุกวัน เป็นเวลา 12 สัปดาห์ สามารถลดการเพิ่มระดับคอเลสเตอรอลและ LDL ได้ เมื่อเทียบกับหนูกลุ่มควบคุมที่ได้รับอาหารไขมันสูง แต่ไม่มีผลต่อระดับไตรกลีเซอร์ไรด์และ HDL นอกจากนี้ ค่าทางชีวเคมีที่เกี่ยวข้องกับการทำงาน
ของตับและไต การเจริญเติบโต และการกินอาหารของหนูกลุ่มที่ได้รับสารสกัดส้มป่อยและยามาตรฐานไม่แตกต่างจากหนูกลุ่มควบคุมที่ได้รับอาหารไขมันสูง แสดงให้เห็นว่าสารสกัดด้วยน้ำของใบส้มป่อยมีศักยภาพในการลดระดับไขมันในเลือดเมื่อให้พร้อมกับอาหารที่มีคอเลสเตอรอลสูง โดยกลไกการออกฤทธิ์ส่วนหนึ่งน่าจะเกี่ยวข้องกับการยับยั้งเอนไซม์ HMG-CoA reductase และฤทธิ์ต้านออกซิเดชันอาจช่วยลดอุบัติการณ์ของหลอดเลือดแดงแข็ง ควรมีการศึกษาฤทธิ์และกลไกการลดไขมันของสารสกัดส้มป่อยแยกส่วนต่อไปในห้องปฏิบัติการและในหนูแรทที่มีภาวะไขมันในเลือดสูง เพื่อหาสารออกฤทธิ์ก่อนนำไปพัฒนาเป็นยาจากสมุนไพรที่ควบคุมปริมาณสารสำคัญเพื่อลดไขมันในเลือดต่อไป
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Hajar R. Risk factors for coronary artery disease: Historical perspectives. Heart Views. 2017;18(3):109-14.
Stone NJ, Robinson JG, Lichtenstein AH, Merz NB, Blum CB, Eckel RH, Goldberg AC, Gordon D, Levy D, Lloyd-
Jones DM, McBride P, Schwartz JS, Shero ST, SmithJr SC, Watson K, Wilson PWF. 2013 ACC/AHA Guideline on the
treatment of blood cholesterol to reduce atherosclerotic cardiovascular risk in adults: A report of the American
College of Cardiology/ American Heart Association task force on practice guidelines. Circulation. 2014;129(25
Suppl 2):S1–S45.
Sookvanichsilp N. Hypolipidemic drug...muscle-related adverse events. [internet]. 2019 [cited 2020 Aug 10]; Available from: https://pharmacy.mahidol.ac.th/th/knowledge/article/475 (in Thai).
Nielsen IC. Leguminosae-Mimosoideae (Acacia concinna). In: Smitinand T, Larsen K, editors. Flora of
Thailand. Volume 4, Part 2. Bangkok: Forest Herbarium, Royal Forest Department; 1985. p. 169-70.
Maslin BR, Seigler DS, Ebinger J. New combinations in Senegalia and Vachellia (Leguminosae: Mimosoideae)
for Southeast Asia and China. Blumea. 2013;58(1):39-44.
Faculty of Pharmaceutical Sciences, Ubon Ratchathani University. Sompoi. [internet]. [cited 2021 Jan 5].
Available from: http://www.thaicrudedrug.com/main.php?action=viewpage&pid=129 (in Thai).
National List of Essential Medicines (No. 2) B.E. 2554 (2011). Published in Government Gazette on 28 June B.E.
(2011). (in Thai).
Kongsamai P. Lanna indigenous vegetables. [internet]. 2017 [cited 2021 Mar 2]. Available from: https://panutdakongsamai.wordpress.com/
Raja XV, Sivaraj R. Screening of Secondary Metabolites and Antibacterial Activity of Acacia concinna leaves. Int
Res J Pharm. 2012;3(10):130-1.
Antil R, Priyanka, Dahiya P, Singh N. Phytochemical and antibacterial potential of acetone leaf extract of Acacia concinna (Willd.) DC. Int J Pharmacogn. 2016;3(3):161-6.
Soogarun S, Suwansuksri J. Inhibition of Heinz body induction of six common Thai medicinal leaves and
creeping stems in in vitro antioxidant study model. Acta Hortic. 2005;680:161-3.
Rao TP, Htay HH, Yasuda NK, Sugino H, Ohkubo, Hayashi T, Okamoto T, Suzuki K. Antioxidant and anti-thrombotic properties of selected plant extracts of Asia. Austin J Nutr Metab. 2014;1(1):6.
Lumlerdkij N, Boonrak R, Booranasubkajorn S, Akarasereenont P, Heinrich M. In vitro protective effects of plants frequently used traditionally in cancer prevention in Thai traditional medicine: An ethnopharmacological study. J Ethnopharmacol. 2020;250:112409.
Leaves, flowers and vegetables. [internet]. 2011 [cited 2021 Mar 2]. Available from: https://www.mcgill.ca/
cine/files/cine/karen_datatables_leaves_flowers_vegetables_dec11_0.pdf
Sharma N. Free radicals, antioxidants and disease. Biol Med. 2014;6(3):1-6.
Mao X, Gu C, Chen D, Yu B, He J. Oxidative stressinduced diseases and tea polyphenols. Oncotarget.
;8(46):81649-61.
Kwiterovich PO. The effect of dietary fat, antioxidants, and pro-oxidants on blood lipids, lipoproteins, and atherosclerosis. J Am Diet Assoc. 1997;97(7 Suppl):S31-41.
Tribble DL. Antioxidant consumption and risk of coronary heart disease: Emphasis on vitamin C, vitamin E,
and b-carotene: A statement for healthcare professionals from the American Heart Association. Circulation.
;99(4):591-5.
Department of Medical Sciences, Ministry of Public Health. Thai Pharmacopoeia. Vol. I and II Supplement
Nonthaburi: Department of Medical Sciences, Ministry of Public Health; 2005. 40 p.
Halliwell B, Gutteridge JM, Aruoma OI. The deoxyribose method: a simple “test tube” assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals. Anal Biochem. 1987;165(1):215-9.
Nishikimi M, Appaji N, Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine
methosulfate and molecular oxygen. Biochem Biophys Res Commun. 1972;46(2):849-54.
Chung KT, Wong TY, Wei CI, Huang YW, Lin Y. Tannins and human health: A review. Crit Rev Food Sci Nutr.
;38(6):421-64.
Kim SW, Park SK, Kang SI, Kang HC, Oh HJ, Bae CY, Bae DH. Hypocholesterolemic property of Yucca schidigera
and Quillaja saponaria extracts in human body. Arch Pharm Res. 2003;26(12):1042-6.
Ghimire BK, Tamang JP, Yu CY, Jung SJ, Chung IM. Antioxidant, antimicrobial activity and inhibition of
α-glucosidase activity by Betula alnoides Buch. bark extract and their relationship with polyphenolic compounds
concentration. Immunopharmacol Immunotoxicol. 2012;34(5):824-31.
Mukherjee PK. Plant products with hypocholesterolemic potentials. Adv Food Nutr Res. 2003;47:277-338.
Amany Ali MM, Tawfik MF, Hikal MS, Tag El-Din MA. Hypocholesterolemic effect of saponin extracts in experimental animals. Arab Univ J Agric Sci. 2019;Special Issue, 26(2D):2463-78.
Devi S, Singh R. Antioxidant and anti-hypercholesterolemic potential of Vitis vinifera leaves. Pharmacogn J.
;9(4):565-72.
Ji C, Li C, Gong W, Niu H, Huang W. Hypolipidemic action of hydroxycinnamic acids from cabbage (Brassica
oleracea L. var. capitata) on hypercholesterolaemic rat in relation to its antioxidant activity. J Food Nutr Res.
;3(5):317-24.
Kamesh V, Sumathi T. Antihypercholesterolemic effect of Bacopa monniera linn. on high cholesterol diet induced hypercholesterolemia in rats. Asian Pac J Trop Med. 2012;5(12):949-55.
Pangestika I, Oksal E, Tengku-Muhammad TS, Amir H, Syamsumir DF, Wahid MEA, Andriani Y. Inhibitory
effects of tangeretin and trans-ethyl caffeate on the HMGCoA reductase activity: Potential agents for reducing
cholesterol levels. Saudi J Biol Sci. 2020;27(8):1947-60.
Saravanan S, Srikumar R, Manikandan S, Jeya Parthasarathy N, Sheela Devi R. Hypolipidemic effect of
Triphala in experimentally induced hypercholesteremic rats. Yakugaku Zasshi. 2007;127(2):385-8.
Maruthappan V, Shree KS. Hypolipidemic activity of haritaki (Terminalia chebula) in atherogenic diet induced
hyperlipidemic rats. J Adv Pharm Technol Res. 2010;1(2):229-35.
Ruangaram W, Kato E. Selection of Thai medicinal plants with Anti-obesogenic potential via in vitro methods.
Pharmaceuticals (Basel). 2020;13(4):56.
Silva LS, Miranda AM, Brito Magalhães CL, Dos Santos RC, Pedrosa ML, Silva ME. Diet supplementation with
b-carotene improves the serum lipid profile in rats fed a cholesterol-enriched diet. J Physiol Biochem.
;69(4):811-20.
Prashanth A, Jeyakumar SM, Giridharan NV, Vajreswari A. Vitamin A-enriched diet modulates reverse
cholesterol transport in hypercholesterolemic obese rats of the WNIN/Ob strain. J Atheroscler Thromb. 2014;
(11):1197-207.
Department of Examinations: Technical Service Department. CLEA Japan. Biological background data of Jcl:SD
rats (June 1991). Bangkok: Nomura Siam International Co., Ltd.; 1991.