องค์ประกอบทางเคมีจากส่วนเหนือดินของหญ้ายุ่ม (Centotheca lappacea (L.) Desv.)

Main Article Content

Thavatchai Kamoltham
Supattra Rungsimakan
Kritsana Supan
Pornsiri Rodsienglump

บทคัดย่อ

หญ้ายุ่ม หรือ barbed grass (Centotheca lappacea (L.) Desv.) เป็นสมุนไพรพื้นบ้านที่มีสรรพคุณการใช้ในหญิงหลังคลอดโดยการรมหรือนำมาต้มน้ำดื่ม การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบองค์ประกอบทางเคมีจากส่วนเหนือดินของหญ้ายุ่ม โดยศึกษาองค์ประกอบทางเคมีด้วยการวิเคราะห์ด้วยเทคนิคต่าง ๆ เช่น ปริมาณวิตามินและกรดอะมิโนวิเคราะห์ด้วย HPLC ส่วนสารสกัดหยาบและควันไฟที่เกิดจากการเผาวิเคราะห์ด้วย GC/MS ปริมาณแร่ธาตุและซิลิกาวิเคราะห์ด้วย X-Ray Fluorescence รวมถึงการหาปริมาณฟีนอลิกรวม และปริมาณเฟลโวนอยด์รวม นอกจากนี้ยังมีการตรวจสอบกลุ่มพฤกษเคมีโดยใช้เทคนิคโครมาโทกราฟีชนิดแผ่นบาง (Thin Layer Chromatography-phytochemical screening) ผลการศึกษาพบว่าส่วนเหนือดินของหญ้ายุ่มประกอบด้วยโปรตีนร้อยละ 9.08 ไขมันร้อยละ 0.25 ปริมาณเส้นใยอาหารทั้งหมด (total dietary fiber) ร้อยละ 71.87 ปริมาณเถ้ารวมร้อยละ 9.27 ปริมาณแร่ธาตุต่าง ๆ รวมร้อยละ 13.25 พบซิลิการ้อยละ 6.15 และซิลิกอนร้อยละ 2.89 นอกจากนี้ยังมีกรดอะมิโน และวิตามินต่าง ๆ เมื่อนำมาวิเคราะห์ด้วยเทคนิค GC/MS พบว่าประกอบด้วยสารกลุ่มฟีนอลิก, กรดไขมัน, สารกลุ่มไทรเทอร์พีน และสารกลุ่มไฟโตสเตอรอล โดยพบสาร 4-coumaric acid และ 5,7,4'-trimethoxyflavone เป็นสารที่แยกได้จากกระบวนการทางโครมาโทกราฟี การศึกษาองค์ประกอบทางเคมีจากควันไฟที่เกิดจากการเผาผงหญ้ายุ่มแห้ง และคราบเหลืองที่เกิดจากการเผา พบสารกลุ่มฟีนอลิก เช่น อนุพันธ์ของฟีนอล และกรดไขมัน การตรวจวัดปริมาณฟีนอลิกรวมต่อน้ำหนักผงแห้ง พบว่ามีปริมาณสูงสุดในสารสกัดที่ได้จากน้ำต้ม และปริมาณเฟลโวนอยด์รวมทั้งหมดต่อน้ำหนักผงแห้ง มีค่าสูงสุดในสารสกัดด้วยเอทานอล การตรวจสอบพฤกษเคมีเบื้องต้นโดยใช้เทคนิคโครมาโทกราฟีชนิดแผ่นบาง (Thin Layer Chromatography-phytochemical screening) ไม่พบสารกลุ่มแอลคาลอยด์ สรุปได้ว่า ส่วนเหนือดินของหญ้ายุ่มประกอบด้วยโปรตีน สารกลุ่มฟีนอลิก สารกลุ่มเฟลโวนอยด์ และแร่ธาตุต่าง ๆ ซึ่งเป็นสารพฤกษเคมีเชิงซ้อน (phytochemical-complex) ที่อาจมีบทบาทในการบำรุงร่างกายของหญิงหลังคลอดตามหลักภูมิปัญญาไทย คำสำคัญ: หญ้ายุ่ม, Centotheca lappacea, ซิลิกา, ฟีนอลิก, เฟลโวนอยด์

Article Details

ประเภทบทความ
Original Articles

เอกสารอ้างอิง

1. Pitiporn S. Record of Thailand 7: herbal treatment for woman. Bangkok: Pauramutha Karn Pim; 2014. p. 134-6. (in Thai)
2. Office of the Forest Herbarium, Department of National Parks, Wildlife and Plant Conservation. Tem Smitinandûs Thai Plant Names. 2014 Rev. ed. Bangkok: Office of
National Buddhism Press; 2014. p. 122. (in Thai)
3. The library of Abhaibhubejhr. Ya Hee Yum, the herb for woman rejuvenation [Internet]. 2014 [cited 2015 Jan 26]. Available from: http://www.abhaiherb.com/ knowledge/thaiherb/5993 (in Thai)
4. Bureau of Animal Nutrition Development, Department of Livestock Development. Centotheca latifolia (Osb.) Trin. [Internet] n.d. [cited 2015 Jan 26]. Available from:
http://nutrition.dld.go.th/exhibision/native_grass/grass/ Centotheca%20%20latifolia.htm (in Thai)
5. Norsaengsri M, Chantaranothai P. The tribe Centotheceae (Poaceae) in Thailand. Thai For Bull (Bot.). 2008;36:52-60.
6. Liang L, Phillips SM. Tribe Centotheceae. In: Wu ZY, Raven PH, Hong DY. editors. Flora of China. Vol. 22: Poaceae. Beijing and St. Louis, MO: Science Press and
Missouri Botanical Garden; 2006. p. 444-6. Available from: http://flora.huh.harvard.edu/China/mss/volume22/FOC22_16_Centotheceae.pdf
7. McClatchey W. The ethnopharmacopoeia of Rotuma. J Ethnopharmacol. 1996;50:147-56.
8. Quattrocchi U. CRC world dictionary of medicinal and poisonous plants: common names, scientific names, eponyms, synonyms, and etymology. Boca Raton,FL:
CRC Press. 2012. p. 884.
9. Department of Medical Sciences, Ministry of Public Health. Thai Herbal Pharmacopoeia 2009 vol. III. Bangkok: Office of National Buddhism Press; 2009. p 103-62.
10. Official Methods of Analysis of AOAC International. 19th ed. Maryland: AOAC International; 2012. Official method 938.08.
11. Official Methods of Analysis of AOAC International. 18th Ed. Maryland: AOAC International; 2005. Official method 992.23.
12. Official Methods of Analysis of AOAC International. 19th ed. Maryland: AOAC International; 2012. Official method 2003.05.
13. Official Methods of Analysis of AOAC International. 19th ed. Maryland: AOAC International; 2012. Official method 985.29.
14. Munzuroglu O, Karatas F, Geckil H. The vitamin and selenium contents of apricot fruit of different varieties cultivated in different geographical regions. Food Chem.
2003;83(2):205-12.
15. Batifoulier F, Vemy MA, Chanliaud E, Remesy C, Demigne C. Effect of different breadmaking methods on thiamine, riboflavin and pyridoxine contents of wheat
bread. J Cereal Sci. 2005;42(1):101-8.
16. Gatti R, Gioia MG. Liquid chromatographic determination with fluorescence detection of B6 vitamers and riboflavin in milk and pharmaceuticals. Anal Chim Acta. 2005;538(1-2):135-41.
17. Sanchez-Moreno C, Plaza L, de Ancos B, Cano MP. Vitamin C, provitamin A carotenoids, and other carotenoids in high pressurized orange juice during
refrigerated storage. J Agric Food Chem. 2003;51(3):647-53.
18. British Standards Institution (BSI). Foodstuffs-determination of vitamin A by high performance liquid chromatography-P.1: Measurement of all-trans-retinol
and 13-cis-retinol. BS EN 12823-1:2000.
19. Herbert P, Barros P, Ratola N, Alves A. HPLC determination of amino acids in musts and port wine using OPA-FMOC derivatives. J Food Sci. 2000;65(7):1130-3.
20. Kaisoon O, Siriamornpun S, Weerapreeyakul N, Meeso N. Phenolic compounds and antioxidant activities of edible flowers from Thailand. J Funct Foods, 2011;3(2):88-
99.
21. Woisky RG, Salatino A. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality control. J Apic Res. 1998;37(2):99-105.
22. Sutthanut K, Sripanidkulchai B, Yenjai C, Jay M. Simultaneous identification and quantitation of 11 flavonoid constituents in Kaempferia parviflora by gas
chromatography. J Chromatogr A. 2007;1143 (1-2):227-33.
23. Yi B, Hu L, Mei W, Zhou K, Wang H, Luo Y, et al. Antioxidant phenolic compounds of Cassava (Manihot esculenta) from Hainan. Molecules. 2010;16(12):10157-67. doi:10.3390/molecules161210157
24. Robards K, Prenzler PD, Tucker G, Swatsitang P, Glover W. Phenolic compounds and their role in oxidative processes in fruits. Food Chem. 1999;66(4):401-36.
25. Pietta PG. Flavonoids as antioxidants. J Nat Prod. 2000;63(7):1035-42.
26. Filho AAO, Fernandes HMB, Sousa JP, Maia GLA, Barbosa-Filho JM, Lima EO, et al. Antibacterial activity of flavonoid 5, 7, 4'- trimethoxyflavone isolated from
Praxelis clematides R.M. King & Robinson. Bol Latinoam Caribe Plant Med Aromat. 2013;12(4):400-4.
27. Filho AAO, Fernandes HMB, Sousa JPD, Maia GLDA, Filho JMB, Assis TJCFD, et al. Antifungal effect of flavonoid 5, 7, 4'- trimethoxyflavone against Candida
krusei strains. IJTDH. 2015;5(2):136-40. Article no. IJTDH.2015.014.
28. Yenjai C, Prasanphen K, Daodee S, Wongpanich V, Kittakoop P. Bioactive flavonoids from Kaempferia
parviflora. Fitoterapia. 2004;75(1):89-92.
29. Luceri C, Giannini L, Lodovici M, Antonucci E, Abbate R, Masini E, et al. p-Coumaric acid, a common dietary phenol, inhibits platelet activity in vitro and in vivo. Br
J Nutr. 2007;97(3):458-63.
30. Lodovici M, Raimondi L, Guglielmi F, Gemignani S, Dolara P. Protection against ultraviolet B-induced oxidative DNA damage in rabbit corneal-derived cells
(SIRC) by 4-coumaric acid. Toxicology. 2003;184(2-3):141-7.
31. Lodovici M, Caldini S, Morbidelli L, Akpan V, Ziche M, Dolara P. Protective effect of 4-coumaric acid from UVB ray damage in the rabbit eye. Toxicology. 2009;255(1-
2):1-5.
32. Opinion of the scientific panel on dietetic products, nutrition and allergies on a request from the Commission related to the tolerable upper intake level of silicon.
Request No. EFSA-Q-2003-018. The EFSA J. 2004;60:1-11. Available from: http://www.efsa.europa.eu/sites/default/files/scientific_output/files/main_documents/
60.pdf
33. Price CT, Koval KJ, Langford JR. Silicon: a review of its potential role in the prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. Inter J Endocrin. 2013.
article ID 316783. Available from: http://dx.doi.org/10.1155/2013/316783
34. Ikegami F, Sekine T, Fujii Y. Antidermatophyte activity of phenolic compounds in çmokusaku-ekié. J Pharm Soc Jpn. 1998;118(1):27-30.
35. Rupasinghe HPV, Bitzer JB, Ahn T, Odumeru JA. Vanillin inhibits pathogenic and spoilage microorganisms in vitro and aerobic microbial growth in freshcut
apples. Food Res Intl. 2006;39(5):575-80.
36. Fitzgerald DJ, Stratford M, Michael JG, Narbad A. Structure-function analysis of the vanillin molecule and its antifungal properties. J Agric Food Chem. 2005;53(5):1769-75.
37. Hahn S, Kielhorn J, Koppenhofer J, Wibbertmann A, Mangelsdorf I. Resorcinol: Concise international chemical assessment document 71. Geneva: World
Health Organization; 2006. p 10. Available from: http://www.who.int/ipcs/publications/cicad/cicad71.pdf