การชักนำแคลลัสและการผลิตสาร Rosmarinic acid ของปอบิด
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำและวัตถุประสงค์: ปอบิด (Helicteres isora L.) เป็นพืชสมุนไพรที่มีฤทธิ์ทางเภสัชวิทยาหลากหลาย มีสารต้านอนุมูลอิสระ ต้านมะเร็ง ยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์ และฤทธิ์ลดไขมันในเลือด การเพาะปลูกปอบิดมีปริมาณสารออกฤทธิ์ไม่สม่ำเสมอเนื่องจากปัจจัยหลายประการ ดังนั้นการศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนาอาหารเลี้ยงแคลลัสของปอบิดที่เหมาะสมในการเหนี่ยวนำให้เกิดสาร Rosmarinic acid (RA) ด้วยวิธีการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช
วิธีการศึกษา: นำตาข้างที่ปราศจากเชื้อของปอบิดมาเพาะเลี้ยงบนอาหาร Marashige และ Skoog (MS) ที่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโตไธไดอะซูรอน (TDZ) และกรดแนฟทาลีนอะซิติก (NAA) เป็นระยะเวลา 45 วัน จนเกิดแคลลัส หลังจากนั้นหาค่า RA ในแคลลัส เปรียบเทียบกับผลปอบิดที่เก็บจากแหล่งธรรมชาติและแหล่งปลูก ด้วยวิธีโครมาโทกราฟฟีของเหลวสมรรถนะสูง (HPLC)
ผลการศึกษา: จากผลการศึกษาพบว่า ตาข้างของปอบิดสามารถสร้างแคลลัสได้ดีในอาหารสูตร MS ที่เติม TDZ 0.4 มิลลิกรัมต่อลิตร และ NAA 0.3 มิลลิกรัมต่อลิตร เป็นเวลา 45 วัน โดยสามารถชักนำให้เกิดแคลลัสของปอบิดมีเส้นผ่านศูนย์กลางเท่ากับ 2.9 ± 0.58 เซนติเมตร ความเข้มข้นของสาร RA ที่วัดได้จากแคลลัสของปอบิดอยู่ที่ร้อยละ 0.3939 ของน้ำหนักแห้ง และสูงกว่าจากแหล่งธรรมชาติประมาณ 4.5 เท่า
อภิปรายผล: การเพาะเลี้ยงแคลลัสสามารถเพิ่มประสิทธิภาพ และประสิทธิผลในการสร้างสารสำคัญในพืชสมุนไพรที่ต้องการได้ นอกจากนี้ยังช่วยลดปัจจัยต่าง ๆ ที่เกิดจากการสกัดสารจากพืชโดยตรง เช่น ร่นระยะเวลา ต้นทุนต่าง ๆ รวมถึงการปนเปื้อนสารเคมี โลหะหนัก และเชื้อจุลินทรีย์ต่าง ๆ ดังนั้นสารที่ได้จากกระบวนการนี้จึงมีคุณภาพ และเหมาะสมต่อยอดไปใช้ทางการแพทย์ และทางอุตสาหกรรมสารสกัดพืชสมุนไพรต่อไป
ข้อสรุป และข้อเสนอแนะ: สูตรอาหารนี้มีความเหมาะสมสำหรับการเพาะเลี้ยงแคลลัสในการผลิตสาร RA อย่างไรก็ตาม การศึกษานี้จัดทำขึ้นเฉพาะเทคนิคการเพาะเลี้ยงแคลลัสพื้นฐานเท่านั้น การเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตสาร RA สามารถทำได้โดยการเติมสารกระตุ้นอื่น ๆ
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
The plant list. Malvaceae [Internet]. 2013. [cited 2023 Aug 16]; Available from: http://www.theplantlist.org/tpl1.1/record/kew-2843218
Seepen S, Phengklai C. Thai plant in Suanluang RAMA IX (Vol.2). Bangkok: Amarin Printing and Publishing Public Company Limited; 1999. 152 p. (in Thai)
Subcharoen P, Reuanglangsi N, Deewiset K. Thai herbs in central national park. 2nd ed. Thai traditional medicine development foundation; 2006. 164 p. (in Thai)
Varghese E, Pappachen KL, Narayanan SS. Isolation and evaluation of antimicrobial properties of isolated phytoconstituents of fruits of Helicteres isora Linn. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 2012;3(3):959-64.
Tambekar DH, Khante BS, Panzade BK, Dahikar SB, Banginwar YS. Evaluation of phytochemical and antibacterial potential of Helicteres isora L. fruits against enteric bacterial pathogens. African Journal of Traditional Complementary and Alternative Medicines. 2008;5(3):290-3.
Venkatesh S, Sailaxmi K, Reddy BM, Mullangi R. Antimicrobial activity of Helicteres isora root. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2007;69(5):687-9.
Dayal R, Singh A, Ojha RP, Mishra KP. Possible therapeutic potential of Helicteres isora (L.) and it's mechanism of action in diseases. Journal of Medicinal Plants Studies. 2015;3(2):95-100.
Kamiya K, Saiki Y, Hama T, Fujimoto Y, Endang H, Umar M, Satake T. Flavonoid glucoronides from Helicteres isora. Phytochemistry. 2001;57:297-301.
Vennila S, Bupesh G, Saravanamurali K, Kumar VS, Raja RS, Saran N, Magesh S. In silico docking study of compounds elucidated from Helicteres isora fruits with ampkinase-insulin receptor. Bioinformation. 2014;10(5):263-6.
Satake T, Kamiya K, Saiki Y, Hama T, Fujimoto Y, Kitanaka S, Kimura Y, Uzawa J, Endang H, Umar M. Studies on the constituents of fruits of Helicteres isora L. Chemical and Pharmaceutical Bulletin. 1999;47(10):1444-7.
Chandirasegaran G, Elanchezhiyan C, Ghosh K, Sethupathy S. Determination of antidiabetic compounds from Helicteres isora fruits by oral glucose tolerance test. Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2016;6(2):172-4.
Shekarchi M, Hajimehdipoor H, Saeidnia S, Gohari A.R, Hamedani M.P. Comparative study of rosmarinic acid content in some plants of Labiatae family. Pharmacogn Mag. 2012;8(29):37-41.
Swarup V, Ghosh J, Ghosh S, Saxena A, Basu A. Antiviral and anti-inflammatory effects of rosmarinic acid in an experimental murine model of Japanese encephalitis. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:3367-70.
Hooker CW, Lott WB, Harrich D. Inhibitors of human immunodeficiency virus type 1 reverse transcriptase target distinct phases of early reverse transcription. J Virol. 2001;75:3095-104.
Huang SS, Zheng RL. Rosmarinic acid inhibits angiogenesis and its mechanism of action in vitro. Cancer Lett. 2006;239:271-80.
Lu Y, Foo LY. Polyphenolics of Salvia- A review. Phytochemistry. 2002;75:197-202.
Murashige T, Skooge T. A revised medium for rapid growth bioassays with tobacco tissue culture. Physiol Plantarum. 1962;15:473-93.
Sanguansermri M, Phimsen N, Wongsawad P, Buddharaksa P. Effect of NAA and TDZ combinations on callus induction of drumstick (Moringa oleifera Lam.). Naresuan Phayao J. 2014;7:242-51. (in Thai).
Wongwicha W, Tanaka H, Shoyama Y, Tuvshintogtokh I, Putalun W. Production of glycyrrhizin in licorice callus cultures. Z Naturforsch C. 2008;63:413-7.
Marsud S, Thongchin T, somkid K, Poolsab P, Paparvadee S, Kotchaporn C, Phrugmanon, T, Pranakhon R, Pinta W, Banyati P, Chaisomboonpan S. The cannabinoid contents in different growth stages of thai cannabis sativa L. leaves. Bull Dept Med Sci. 2021;63(3):524-40. (in Thai)
Kumar V, Desai D, Shriram V. Hairy root induction in Helicteres isora L. and production of diosgenin in hairy roots. Nat. Prod. Bioprospect. 2014;4:107–12.
Kikowska M, Budzianowski J, Krawczyk A, Thiem B. Accumulation of rosmarinic, chlorogenic and caffeic acids in vitro cultures of Eryngium planum L. Acta Physiol Plant. 2012;34:2425-33.
Ekiert H, Kwiecien I, Szopa A. Rosmarinic acid production in plant in vitro cultures. Pol J Cosmetol. 2013;16(1):49-58.
Radapong S, Sahad T, Harnkit N, Suppajariyawat P, Akkpaiboon O.P, Meechalad W, Sincharoenpokai P, Niumsakul S, Buaboa S, Ontong S, Kenneth J.R, Chaisomboonpan S. Anti-SARS-CoV-2 activity screening of the selected Thai medicinal plants and potential host-target molecules. Bull Dept Med Sci. 2022;64(2):93-105. (in Thai)
