Evaluation of the Microbiological Quality and Identification of Vibrio spp. in Fresh and Fish Sauce Marinated Seafood by 16S rRNA Gene Analysis for Seafood Safety Surveillance
Keywords:
16S rRNA, fresh seafood, fish sauce marinated seafood, Vibrio spp., food safetyAbstract
Fresh and fish sauce–marinated seafood are popular in many areas of Thailand but are prone to contamination by pathogenic microorganisms. This study aimed to compare total microbial counts in fresh and marinated seafood and to identify Vibrio spp. using 16S rRNA gene analysis. Samples of white shrimp, blue swimming crab, and bloody cockle were collected from a market in Mueang District, Chonburi Province, in fresh condition and after marination in fish sauce for 24 and 48 hours (n = 3). Total microbial counts were determined using the standard plate count method, and bacterial species were identified using TCBS selective agar, Gram staining, and nucleotide sequencing. Results showed that fresh seafood had the highest microbial loads, with bloody cockle at 3.19×106 CFU/g and blue swimming crab at 1.86×105 CFU/g, exceeding the Department of Medical Sciences standards. Marination reduced microbial loads, with the lowest counts found in the 48-hour group; for example, marinated shrimp had 2.85×10² CFU/g. The mean total microbial counts (log10 CFU/g) for fresh, 24-hour, and 48-hour marinated samples were 5.536±0.865, 4.449±0.588 and 3.387±0.876, respectively. Statistical analysis showed that fresh seafood differed significantly from 48-hour marinated seafood (p<0.05). Identified bacteria included V. parahaemolyticus, V. alginolyticus, V. cholerae, Aeromonas sp., and Shewanella sp., all of which are gastrointestinal pathogens. In particular, V. cholerae is of epidemiological importance in environmental health. The presence of these bacteria in seafood indicates a potential risk to consumers. The study demonstrates that marination significantly reduces microbial contamination, but raw material quality and hygienic processing remain essential to minimize microbial risks to consumers.
References
กลุ่มวิจัยและวิเคราะห์สถิติการประมง, กองนโยบายและยุทธศาสตร์พัฒนาการประมง, กรมประมง. สถานการณ์การผลิตและการบริโภคสัตว์น้ำทะเล. กรุงเทพฯ: กรมประมง; 2566.
Su YC, Liu C. Vibrio parahaemolyticus: a concern of seafood safety. Food Microbiol. 2007;24(6):549–58.
สุรีย์ นานาสมบัติ, นวรัตน์ โพธิราช, ประทุม แสนมา, สิทธิโชค ศิริศรชัย. การตรวจหาการปนเปื้อน Vibrio parahaemolyticus ในอาหารทะเลสดที่จำหน่ายในกรุงเทพฯ และการศึกษาการต้านทานความร้อน. วารสารมหาวิทยาลัยทักษิณ. 2556;16 (3 ฉบับพิเศษ).
Bakr WMK, Hazzah WA, Abaza AF. Detection of Salmonella and Vibrio species in some seafood in Alexandria. J Am Sci. 2011;7(9):663–8.
กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์. มาตรฐานคุณภาพทางจุลชีววิทยาของอาหาร. กรุงเทพฯ: กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์; 2550.
สำนักระบาดวิทยา กรมควบคุมโรค. รายงานผู้ป่วยโรคอาหารเป็นพิษประจำปี 2562. กรุงเทพฯ: กรมควบคุมโรค; 2563.
ชุติวรรณ เดชสกุลวัฒนา, สุเมตต์ ปุจฉาการ. ความหลากหลายทางชนิดและลักษณะทางพันธุกรรมของจุลชีพที่อาศัยอยู่ร่วมกับฟองน้ำทะเล หมู่เกาะแสมสาร. ชลบุรี: มหาวิทยาลัยบูรพา; 2558.
Srinivasan R, Karaoz U, Volegova M, MacKichan J, Kato-Maeda M, Miller S, et al. Use of 16S rRNA gene for identification of a broad range of clinically relevant bacterial pathogens. PLoS One. 2015;10(2): e0117617.
ละอาด อัญชลี. การจำแนกสปีชีส์ของเชื้อมัยโคแบคทีเรียโดยการหาลำดับเบสของชิ้นส่วน 16S rDNA [วิทยานิพนธ์ปริญญามหาบัณฑิต]. กรุงเทพฯ: จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย; 2544.
นฤมล ศรีสวัสดิ์, คณะ. การระบุชนิดของแบคทีเรียกรดแลคติกที่แยกได้จากน้ำพริกด้วยยีน 16S rRNA. Thai J Sci Technol. 2559;5(2): 160–8.
สำนักคุณภาพและความปลอดภัยอาหาร กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์. รายงานผลการดำเนินงานโครงการบูรณาการอาหารปลอดภัย (Food Safety) ประจำปี 2562. กรุงเทพฯ: กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์; 2562.
Andrews WH, Hammack TS. BAM: Food sampling/preparation of sample homogenate. Rockville (MD): US FDA; 2003.
Maturin L, Peeler JT. BAM: Aerobic plate count. Silver Spring (MD): US FDA; 2001.
นฤมล มาแทน. ปฏิบัติการจุลชีววิทยาอาหาร. นครศรีธรรมราช: มหาวิทยาลัยวลัยลักษณ์; 2560.
Colco R. Gram Staining. Curr Protoc Microbiol. 2005;00(1): Appendix 3C.
Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA, Lane DJ. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J Bacteriol. 1991;173(2):697–703.
Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment… Nucleic Acids Res. 1994;22(11):4673–80.
Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program. Nucleic Acids Symp Ser. 1999;41: 95–8.
Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Mol Biol Evol. 2018;35(6):1547–9.
Jay JM, Loessner MJ, Golden DA. Modern Food Microbiology. 7th ed. New York: Springer; 2005.
นนทวิทย์ อารีย์ชน, สุภาวดี โกยดุล, นิลุบล กิจอันเจริญ. ผลของความเค็มและอุณหภูมิต่อความอยู่รอดของ Vibrio harveyi. วิทยาสารเกษตรศาสตร์ สาขาวิทยาศาสตร์. 2536;27(1):67–73.
อิสมีย์ อาลี, ซามีลา ดูมีแด, พูรกอนนี สาและ, ซูไบด๊ะ หะยีวาเงาะ, คอสียาห์ สะลี, นุรอัยนี หะยียูโซะ, อับดุลลาห์ โดลาห์ ดาลี. การปนเปื้อนของเชื้อ Vibrio parahaemolyticus ในอาหารทะเลสดที่จำหน่ายในเขตเทศบาลยะลาและเมืองปัตตานี. ใน: การประชุมวิชาการระดับชาติ มรภ.นครศรีธรรมราช; 2560.
วรวัฒน์ พรหมเด่น. การตรวจคัดแยกและระบุสายพันธุ์แบคทีเรียกลุ่ม Vibrio ในอาหารทะเล. บุรีรัมย์: มหาวิทยาลัยราชภัฏบุรีรัมย์; 2562.
Prachasitthisak Y, Eamsiri J, Sajjabut S, Rojekittikhun W. Improving the hygiene of fermented shrimp (kung chom) using gamma irradiation. J Trop Med Parasitol. 2009;32(1):9–16.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
This article was published in the Journal of regional healh promotion centre 7 khonkaen. It is considered an academic work or research. The results of the analysis and recommendations are subjective opinions. It is not the opinion of the Journal of regional healh promotion centre 7 khonkaen or the editorial office in any way. Authors are responsible for their own articles.
