Anti-inflammatory and anti-oxidative activities of Stephania pierrei extracts

ศิริลักษณ์  กมลวรรณสิทธิ์; บังอร  ประจันบาล; เอกรัฐ  คำเจริญ; ปะการัง  ศรีมี

ผู้แต่ง

ศิริลักษณ์ กมลวรรณสิทธิ์
บังอร ประจันบาล
เอกรัฐ คำเจริญ สาขาวิชาพัฒนาผลิตภัณฑ์อุตสาหกรรมเกษตร คณะเทคโนโลยีการเกษตร มหาวิทยาลัยบูรพา สระแก้ว 27160
ปะการัง ศรีมี

คำสำคัญ:

บัวบกป่า , ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ, ฤทธิ์ต้านการอักเสบ, ความเป็นพิษต่อเซลล์ , สารสื่อกลางการอักเสบ

บทคัดย่อ

ส่วนหัวใต้ดินของบัวบกป่านั้นถูกนำมาใช้ในการทางแพทย์พื้นบ้านใช้ในการรักษาโรคเกี่ยวกับการบวมน้ำ ไมเกรน โรคหัวใจที่เกี่ยวข้องกับการอักเสบ วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้เพื่อศึกษาการต้านอนุมูลอิสระและการต้านการอักเสบของสารสกัดจากส่วนหัวใต้ดินของบัวบกป่าด้วยน้ำ (SH) และสกัดด้วยเอทานอล (SE) ด้วยการวัดอนุมูลอิสระไฮดรอกซิลและซุปเปอร์ออกไซด์ การตรวจสอบการแสดงออกของยีนของสารสื่อกลางการอักเสบ ได้แก่ IL-1ß, COX2, TNF-α, IL-6 และ iNOS เปรียบเทียบกับ ß-actin ด้วยวิธี Reverse transcription polymerase chain (RT-PCR) ตรวจสอบความเป็นพิษต่อเซลล์ของสารสกัดต่อเซลล์มาโครฟาส์ก RAW 264.7 ด้วยวิธี MTT จากการศึกษาพบว่า ทั้งสารสกัด SE และ SH มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูง สารสกัด SE มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระซุปเปอร์ออกไซด์ได้ดีกว่าสารสกัด SH เล็กน้อย การศึกษาของความเป็นพิษของสารสกัด พบว่า สารสกัด SE มีผลการทดสอบความเป็นพิษที่สูงกว่าสารสกัด SH ซึ่งมีค่า IC₅₀ เท่ากับ 96.14±1.79 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร และ 191.80±6.08 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ สารสกัดทั้งสองชนิด (SE และ SH) และสารประกอบมาตรฐานสามารถยับยั้งการแสดงออกของยีนของสารสื่อกลางการอักเสบทั้งหมดอย่างมีนัยสำคัญ โดยสารสกัด SE มีผลต่อการยับยั้งการแสดงออกของ COX-2 ได้ในระดับเดียวกับสารสกัด SH (IC₅₀ เท่ากับ 50.85±2.15 ไมโครกรัมต่อมิลลิกรัม และ 56.54±0.97 ไมโครกรัมต่อมิลลิกรัม ตามลำดับ) นอกจากนี้ สารสกัด SE แสดงให้เห็นว่ามีผลการยับยั้งการแสดงออกของยีน IL-1ß, IL-6 และ TNF-α ได้ดีกว่าสารสกัด SH จากผลการทดลองที่ได้แสดงให้เห็นว่า สารสกัดส่วนหัวใต้ดินของบัวบกป่าอาจมีผลลดการอักเสบได้โดยผ่านทางการยับยั้งการแสดงออกของยีนของสารสื่อกลางการอักเสบ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระได้ ดังนั้น ส่วนหัวใต้ดินของบัวบกป่านั้นเป็นอีกตัวเลือกหนึ่งที่เหมาะต่อการนำไปทำผลิตภัณฑ์เกี่ยวกับการต้านการอักเสบ

Downloads

Download data is not yet available.

เอกสารอ้างอิง

Culig Z. Cytokine disbalance in common human cancers. Biochim Biophys Acta 2011;1813: 308-14.

Landskron G, De la Fuente M, Thuwajit P, Thuwajit C, Hermoso1 MA. Chronic inflammation and cytokines in the tumor microenvironment. J. Immunol. Res 2014;(149185):1-19.

Liu CH, Abrams ND, Carrick DM, Chander P, Dwyer J, Hamlet MRJ, et al. Biomarkers of chronic inflammation in disease development and prevention: challenges and opportunities. Nat Immunol 2017;18(11):1175-80.

Wang RX, Zhou M, Ma HL, Qiao YB, Li QS. The role of chronic inflammation in various diseases and anti-inflammatory therapies containing natural products. Chem Med Chem 2021;16(10):1576-92.

Dary C, Hul S, Kim S, Jabbour F. Lectotypification of Stephania pierrei (Menispermaceae). Edinb. J. Bot 2015;72:423-28.

Waeber C, Moskowitz MA. Migraine as an inflammatory disorder. Neurology 2005;64(10 Suppl 2):S9-S15.

Kinney JW, Bemiller SM, Murtishaw AS, Leisgang AM, Salazar AM, Lamb BT. Inflammation as a central mechanism in Alzheimer's disease. Alzheimers Dement 2018;4:575–90.

Tappayuthpijarn P, Itharat A, Makchuchit S. Acetylcholinesterase inhibitory activity of Thai traditional nootropic remedy and its herbal ingredients. J Med Assoc Thai 2011;94 (Suppl 7):S183-9.

Kamonwannasit S, Kamcharoen A. Phytochemical screening and antibacterial activities of tuber extract of Stephania pierrei Diels. Chiang Mai J. Sci 2018;45(3):1396-406.

Kamonwannasit S, Rupitak Q, Kamcharoen A, Antifungal and antioxidant activities of the extract of Stephania pierrei tubers In: Wongwailkhit K, editors. Proceedings of the 4th RSU International Research Conference on Science and Technology, Social Science, and Humanities 2019: RSUSSH 2019; 2019 April 26; Rangsit University: Research Institute, Rangsit University: International Research Conference; 2019. pp.610-615.

Bailly C. Cepharanthine: An update of its mode of action, pharmacological properties and medical applications. Phytomedicine 2019;62(152956):1-13.

Likhitwitayawuid K, Angerhofer CK, Chai H, Pezzuto JM, Cordell JA, et al. Cytotoxic and antimalarial alkaloids from the tubers of Stephania pierrei. J. Nat. Prod 1993;56(9):1468-78.

Kamonwannasit S, Nantapong N, Kumkrai P, Luecha P, Kupittayanant S, Chudapongse N. Antibacterial activity of Aquilaria crassna leaf extract against Staphylococcus epidermidis by disruption of cell wall. Ann Clin Microbiol Antimicrob 2013;12:1-7.

Halliwell B, Gutteridge JMC, Aruoma OI. The deoxyribose method: a simple “test tube” assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals. Anal. Biochem 1987;165(1):215-9.

Nishikimi M, Rao NA, Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulfate and molecular oxygen. Biochem. Biophys. Res. Communications 1972;46(2):849-54.

Mosmann T. Rapaid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J. Immunol. Methods 1983;65(1-2):55-63.

Won JH, Im HT, Kim YH, Yun KJ, Park HJ, Choi JW, et al. Anti-inflammatory effect of buddlejasaponin IV through the inhibition of iNOS and COX-2 expression in RAW 264.7 macrophages via the NF-kappaB inactivation. Br. J. Pharmacol 2006;148:216-25.

Sugawara I, Yamada H, Mizuno S. Relative importance of STAT4 in murine tuberculosis. J. Med. Microbiol 2003;52:29-34.

Onyebuchi C, Kavaz D. Effect of extraction temperature and solvent type on the bioactive potential of Ocimum gratissimum L. extracts. Sci. Rep 2020;10:21760.

Santos JS, Deolindo CTP, Esmerino LA, Genovese MI, Fujita A, Marques MB, et al. Effects of time and extraction temperature on phenolic composition and functional properties of red rooibos (Aspalathus linearis). Food Res. Int 2016;89(1):476-87.

Semwal DK, Badoni R, Semwal R, Kothiyal SK, Singh GJP, Raw U. The genus Stephania (Menispermaceae):Chemical and pharmacological perspectives. J. Ethnopharmacol 2010;132:369-83.