ฤทธิ์ต้านการอักเสบของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของใบตะคึกต่อเซลล์จอประสาทตามนุษย์ที่เหนี่ยวนำให้เกิดการอักเสบด้วยอินเตอร์ลิวคิน-1เบต้า

ผู้แต่ง

  • วันวิสาข์ รุ่งโรจน์ หลักสูตรวิทยาศาสตรมหาบัณฑิตสาขาวิชาโภชนศาสตร์ คณะแพทยศาสตร์โรงพยาบาลรามาธิบดี และสถาบันโภชนาการ มหาวิทยาลัยมหิดล นครปฐม ประเทศไทย
  • เหรียญทอง พุ่มสวย หน่วยเซลล์และสัตว์ทดลองต้นแบบ สถาบันโภชนาการ มหาวิทยาลัยมหิดล นครปฐม ประเทศไทย
  • ศิริพร ตันติโพธิ์พิพัฒน์ หน่วยเซลล์และสัตว์ทดลองต้นแบบ สถาบันโภชนาการ มหาวิทยาลัยมหิดล นครปฐม ประเทศไทย
  • มลฤดี สุขประสารทรัพย์ หน่วยพิษวิทยาทางอาหาร สถาบันโภชนาการ มหาวิทยาลัยมหิดล นครปฐม ประเทศไทย
  • ชวัลพัชร เมืองน้อย หน่วยเซลล์และสัตว์ทดลองต้นแบบ สถาบันโภชนาการ มหาวิทยาลัยมหิดล นครปฐม ประเทศไทย

คำสำคัญ:

ตะคึก, ภาวะจอประสาทตาเสื่อม, การอักเสบ, อินเตอร์ลิวคิน-1เบต้า, เซลล์จอประสาทตามนุษย์ชนิด ARPE-19

บทคัดย่อ

ภาวะจอประสาทตาเสื่อมเป็นโรคตาที่พบบ่อยซึ่งส่งผลกระทบต่อผู้สูงอายุและเป็นสาเหตุสำคัญของการสูญเสียการมองเห็น การอักเสบของเซลล์จอประสาทตาเป็นสาเหตุสำคัญของการเกิดภาวะจอประสาทตาเสื่อม ใบตะคึกมีสารพฤกษเคมีที่มีคุณสมบัติทางชีวภาพหลากหลาย โดยเฉพาะคุณสมบัติในการต้านการอักเสบ การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบฤทธิ์ต้านการอักเสบของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของใบตะคึก (ALE และ BFA ตามลำดับ) ต่อเซลล์จอประสาทตามนุษย์ที่เหนี่ยวนำให้เกิดการอักเสบ เซลล์จอประสาทตาจะถูกเลี้ยงด้วย ALE และ BFA เป็นเวลา 1 ชั่วโมง จากนั้นเหนี่ยวนำด้วย IL-1β เป็นเวลา 24 ชั่วโมง การศึกษานี้พบว่าเซลล์จอประสาทตาที่ถูกเลี้ยงด้วย ALE และ BFA สามารถลดระดับของ IL-6, IL-8 และ MCP-1 ได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) และไม่เป็นพิษต่อเซลล์ งานวิจัยนี้แสดงให้เห็นว่าใบตะคึกสามารถปกป้องเซลล์จอประสาทตาของมนุษย์จากการกระตุ้นให้เกิดการอักเสบซึ่งเป็นสาเหตุของการเกิดภาวะจอประสาทตาเสื่อมได้ และส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของใบตะคึกก็ยังคงความสามารถป้องกันการอักเสบของเซลล์จอประสาทตาได้ อย่างไรก็ตามควรมีการศึกษาผลของใบตะคึกต่อภาวะจอประสาทตาเสื่อมโดยศึกษาในสัตว์ทดลองและในมนุษย์ต่อไป

เอกสารอ้างอิง

Klein R, Cruickshanks KJ, Nash SD, Krantz EM, Nieto FJ, Huang GH, et al. The prevalence of age-related macular degeneration and associated risk factors. Arch Ophthalmol (1960) 2010;128(6):750-8.

Wong WL, Su X, Li X, Cheung CM, Klein R, Cheng CY, et al. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health 2014;2(2):e106-16.

Ambati J, Fowler BJ. Mechanisms of age-related macular degeneration. Neuron 2012;75(1):26-39.

Mitchell P, Liew G, Gopinath B, Wong TY. Age-related macular degeneration. Lancet (London, England) 2018;392(10153):1147-59.

Kaszubski P, Ben Ami T, Saade C, Smith RT. Geographic Atrophy and Choroidal Neovascularization in the Same Eye: A Review. Ophthalmic Res 2016;55(4):185-93.

Kauppinen A, Paterno JJ, Blasiak J, Salminen A, Kaarniranta K. Inflammation and its role in age-related macular degeneration. Cell Mol Life Sci 2016;73(9):1765-86.

Bok D. The retinal pigment epithelium: a versatile partner in vision. J Cell Sci Suppl 1993;17:189-95.

Fields MA, Del Priore LV, Adelman RA, Rizzolo LJ. Interactions of the choroid, Bruch's membrane, retinal pigment epithelium, and neurosensory retina collaborate to form the outer blood-retinal-barrier. Prog Retin Eye Res 2020;76:100803.

Strauss O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiol Rev 2005;85(3):845-81.

Holtkamp GM, Kijlstra A, Peek R, de Vos AF. Retinal pigment epithelium-immune system interactions: cytokine production and cytokine-induced changes. Prog Retin Eye Res 2001;20(1):29-48.

Cousins SW, Espinosa-Heidmann DG, Csaky KG. Monocyte activation in patients with age-related macular degeneration: a biomarker of risk for choroidal neovascularization? Arch Ophthalmol (1960) 2004;122(7):1013-8.

Ambati J, Atkinson JP, Gelfand BD. Immunology of age-related macular degeneration. Nat Rev Immunol 2013;13(6):438-51.

Buschini E, Piras A, Nuzzi R, Vercelli A. Age related macular degeneration and drusen: neuroinflammation in the retina. Prog Neurobiol 2011;95(1):14-25.

Hooks JJ, Chan CC, Detrick B. Identification of the lymphokines, interferon-gamma and interleukin-2, in inflammatory eye diseases. Invest Ophthalmol Vis Sci 1988;29(9):1444-51.

Kutty RK, Samuel W, Abay R, Cherukuri A, Nagineni CN, Duncan T, et al. Resveratrol attenuates CXCL11 expression induced by proinflammatory cytokines in retinal pigment epithelial cells. Cytokine 2015;74(2):335-8.

Nagineni CN, Kommineni VK, William A, Detrick B, Hooks JJ. Regulation of VEGF expression in human retinal cells by cytokines: implications for the role of inflammation in age-related macular degeneration. J Cell Physiol 2012;227(1):116-26.17.

Nagineni CN, Raju R, Nagineni KK, Kommineni VK, Cherukuri A, Kutty RK, et al. Resveratrol Suppresses Expression of VEGF by Human Retinal Pigment Epithelial Cells: Potential Nutraceutical for Age-related Macular Degeneration. Aging Dis 2014;5(2):88-100.18.

Kutty RK, Nagineni CN, Samuel W, Vijayasarathy C, Jaworski C, Duncan T, et al. Differential regulation of microRNA-146a and microRNA-146b-5p in human retinal pigment epithelial cells by interleukin-1β, tumor necrosis factor-α, and interferon-γ. Mol Vis 2013;19:737-50.

Shahriary AP, Sabzevari MM, Jadidi KM, Yazdani FM, Aghamollaei HP. The Role of Inflammatory Cytokines in Neovascularization of Chemical Ocular Injury. Ocul Immunol Inflamm 2022;30(5):1149-61.

Knickelbein JE, Chan CC, Sen HN, Ferris FL, Nussenblatt RB. Inflammatory Mechanisms of Age-related Macular Degeneration. Int Ophthalmol Clin 2015;55(3):63-78.

Brandli A, Vessey KA, Fletcher EL. The contribution of pattern recognition receptor signalling in the development of age related macular degeneration: the role of toll-like-receptors and the NLRP3-inflammasome. J Neuroinflammation 2024;21(1):64.

Terao R, Obata R, Okubo A, Aoki S, Azuma K, Ahmed T, et al. Cytokine profiles in the aqueous humor following brolucizumab administration for exudative age-related macular degeneration. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 2023;261(9):2465-76.

Waseem AJ, Anwar;Ahmad, Waseem;Fazil, Mohammad. SIRAS (ALBIZIA LEBBECK (L.) BENTH.) AND ITS MEDICINAL USES IN UNANI MEDICINE- A REVIEW. COMPA 2020;10(2):12.1-.5.

Karuppannan K, Priyadharshini S, Sujatha V. Phytopharmacological properties of Albizia species: A review. Int J Pharm Pharm Sci 2013;5:70-3.

Phoraksa O, Chimkerd C, Thiyajai P, Judprasong K, Tuntipopipat S, Tencomnao T, et al. Neuroprotective Effects of Albizia lebbeck (L.) Benth. Leaf Extract against Glutamate-Induced Endoplasmic Reticulum Stress and Apoptosis in Human Microglial Cells. Pharmaceuticals 2023;16(7):989.

Ferruzzi MG, Lumpkin JL, Schwartz SJ, Failla M. Digestive Stability, micellarization, and uptake of beta-carotene isomers by Caco-2 human intestinal cells. J Agric Food Chem 2006;54(7):2780-5.

Chitchumroonchokchai C, Schwartz SJ, Failla ML. Assessment of lutein bioavailability from meals and a supplement using simulated digestion and caco-2 human intestinal cells. J Nutr 2004;134(9):2280-6.

Tao L, Qiu Y, Fu X, Lin R, Lei C, Wang J, et al. Angiotensin-converting enzyme 2 activator diminazene aceturate prevents lipopolysaccharide-induced inflammation by inhibiting MAPK and NF-κB pathways in human retinal pigment epithelium. J Neuroinflammation 2016;13:35.

Praengam K, Muangnoi C, Charoenkiatkul S, Thiyajai P, Tuntipopipat S. Antioxidant and anti-inflammatory activity of aqueous fraction from Albizia lebbeck leaves. Int Food Res J 2017;24:1174-85.

Meshram GG, Kumar A, Rizvi W, Tripathi CD, Khan RA. Evaluation of the anti-inflammatory activity of the aqueous and ethanolic extracts of the leaves of Albizzia lebbeck in rats. J Tradit Complement Med 2016;6(2):172-5.

Koraneeyakijkulchai I, Phumsuay R, Thiyajai P, Tuntipopipat S, Muangnoi C. Anti-Inflammatory Activity and Mechanism of Sweet Corn Extract on Il-1β-Induced Inflammation in a Human Retinal Pigment Epithelial Cell Line (ARPE-19). Int J Mol Sci 2023;24(3).

Bian ZM, Elner SG, Yoshida A, Kunkel SL, Su J, Elner VM. Activation of p38, ERK1/2 and NIK pathways is required for IL-1beta and TNF-alpha-induced chemokine expression in human retinal pigment epithelial cells. Exp Eye Res 2001;73(1):111-21.

Elner VM, Burnstine MA, Strieter RM, Kunkel SL, Elner SG. Cell-associated human retinal pigment epithelium interleukin-8 and monocyte chemotactic protein-1: immunochemical and in-situ hybridization analyses. Exp Eye Res 1997;65(6):781-9.

Izumi-Nagai K, Nagai N, Ozawa Y, Mihara M, Ohsugi Y, Kurihara T, et al. Interleukin-6 receptor-mediated activation of signal transducer and activator of transcription-3 (STAT3) promotes choroidal neovascularization. Am J Pathol 2007;170(6):2149-58.

Liu H, Liu W, Zhou X, Long C, Kuang X, Hu J, et al. Protective effect of lutein on ARPE-19 cells upon H2O2-induced G2/M arrest. Mol Med Rep 2017;16(2):2069-74.

Silván JM, Reguero M, de Pascual-Teresa S. A protective effect of anthocyanins and xanthophylls on UVB-induced damage in retinal pigment epithelial cells. Food Funct 2016;7(2):1067-76.

Shao Y, Yu H, Yang Y, Li M, Hang L, Xu X. A Solid Dispersion of Quercetin Shows Enhanced Nrf2 Activation and Protective Effects against Oxidative Injury in a Mouse Model of Dry Age-Related Macular Degeneration. Oxid Med Cell Longev 2019;2019:1479571.

Miyamoto N, Izumi H, Miyamoto R, Kondo H, Tawara A, Sasaguri Y, et al. Quercetin induces the expression of peroxiredoxins 3 and 5 via the Nrf2/NRF1 transcription pathway. Invest Ophthalmol Vis Sci 2011;52(2):1055-63.

Cao X, Liu M, Tuo J, Shen D, Chan CC. The effects of quercetin in cultured human RPE cells under oxidative stress and in Ccl2/Cx3cr1 double deficient mice. Exp Eye Res 2010;91(1):15-25.

Hytti M, Piippo N, Korhonen E, Kaarniranta K, Kauppinen AJAO. Fisetin and Luteolin decrease inflammation and oxidative stress‐induced cytotoxicity in ARPE‐19 cells. Sci Rep 2015;93.

Noguchi J, Tan Z, McDonnell JF, Perlman JI, Bu P. Kaempferol protects retinal function in a mouse model of light-induced retinal damage. Invest Ophthalmol Vis Sci 2019;60(9):357.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

05/30/2024

รูปแบบการอ้างอิง

รุ่งโรจน์ ว., พุ่มสวย เ., ตันติโพธิ์พิพัฒน์ ศ., สุขประสารทรัพย์ ม., & เมืองน้อย ช. (2024). ฤทธิ์ต้านการอักเสบของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของใบตะคึกต่อเซลล์จอประสาทตามนุษย์ที่เหนี่ยวนำให้เกิดการอักเสบด้วยอินเตอร์ลิวคิน-1เบต้า. วารสารโภชนาการ (Online), 59(1), 73–85. สืบค้น จาก https://he01.tci-thaijo.org/index.php/JNAT/article/view/270995

ฉบับ

ปีที่ 59 ฉบับที่ 1 (2024): มกราคม-มิถุนายน

ประเภทบทความ

บทความวิจัย

สัญญาอนุญาต

บทความที่เผยแพร่ในวารสารโภชนาการ เป็นลิขสิทธิ์ของสมาคมโภชนาการแห่งประเทศไทยฯ