รูปแบบของระดับฮอร์โมนเอสโตรเจนและโปรเจสเตอโรนในอุจจาระตลอดวงรอบการเป็นสัดของเสือปลาที่เชียงใหม่ไนท์ซาฟารี
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์ เพื่อศึกษารูปแบบของระดับฮอร์โมนเอสโตรเจนและโปรเจสเตอโรนจากอุจาระเสือปลาเพศเมียวัยเจริญพันธุ์ในกรงเลี้ยงตลอดวงรอบการเป็นสัด โดยใช้วิธีไม่รบกวนตัวสัตว์
วัสดุอุปกรณ์และวิธีการ ศึกษารูปแบบของระดับฮอร์โมนเอสโตรเจนและโปรเจสเตอโรนตลอดวงรอบของการเป็นสัดในเสือปลาเพศเมียจำนวน 7 ตัว (อายุ 4-9 ปี)เก็บตัวอย่างอุจจาระจากคอกกักเสือปลาอาทิตย์ละสามวันในตอนเช้าวันจันทร์ พุธ และศุกร์ อย่างต่อเนื่องเป็นระยะเวลา 15 เดือนนำตัวอย่างอุจจาระไปอบด้วยตู้อบลมร้อนที่อุณหภูมิ 60 องศาเซลเซียสจนอุจจาระแห้งน้ำหนักไม่เปลี่ยนแปลง จากนั้นนำไปสกัดด้วยวิธี Dry weight fecal extraction–boiling นำไปสกัดฮอร์โมนด้วยเอทานอลและหาระดับความเข้มข้นของเอสโตรเจนและโปรเจสเตอโรน ด้วยวิธีอีไอเอ(enzyme immunosorbent assay: EIA)
ผลการศึกษาพบว่าเสือปลาทุกตัวมีวงรอบการเป็นสัดอย่างน้อยหนึ่งครั้งในรอบปี โดยในระยะ follicular phase มีค่าเฉลี่ยความเข้มข้นสูงสุดของเอสโตรเจนเท่ากับ 562.49 ± 95.13 ng/g (means ± SEM) ซึ่งสูงกว่าค่าความเข้มข้นพื้นฐาน (117.50 ± 10.54 ng/g) 4.7เท่า และมีระยะวงรอบของการเป็นสัดเฉลี่ย 18.27 ± 1.25 วัน ขณะที่ในระยะ luteal phase มีค่าเฉลี่ยของความเข้มข้นของโปรเจสเตอโรนเท่ากับ 32.68 ± 2.54 µg/g ซึ่งสูงกว่าค่าความเข้มข้นพื้นฐานของ โปรเจสเตอโรน (3.69 ± 0.86 µg/g feces) 8.86 เท่า
ข้อสรุปเสือปลามีวงรอบการเป็นสัดอย่างน้อยหนึ่งครั้งในรอบปี มีระยะวงรอบของการเป็นสัดเฉลี่ย 18.27 ± 1.25 วัน ฤดูกาลไม่มีผลต่อระดับความเข้มข้นของฮอร์โมนเอสโตรเจนและโปรเจสเตอโรนและข้อมูลจากการศึกษานี้สามารถนำไปประยุกต์ใช้ประโยชน์ในการจัดการการผสมพันธุ์และแผนการพัฒนาเทคนิคทางด้านวิทยาการช่วยสืบพันธุ์ เช่น การผสมเทียมในเสือปลาต่อไป
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Brown, J.L. 2011. Female reproductive cycles of wild female felids. Animal Reproduction 124: 155–162.
Brown, J.L. 2008. Wildlife endocrinology manual. Front Royal VA: Conservation and Research Center Endocrine Research Laboratory.
Brown, J.L, Walker, S., Steinman, K. 2004. Endocrine manual for the reproductive assessment of domestic and non-domestic species. 2nd ed. USA: Smithsonian institution.
Brown, J.L, Wasser, S.K., Wildt, D.E., Graham, L.H. 1994. Comparative aspects of steroid hormone metabolism and ovarian activity in felids, measured noninvasively in feces. Biology of Reproduction 51, 776-786.
Graham, L.H., Swanson, W.F., Brown, J.L. 2000. Chorionic gonadotropins administration in domestic cats causes an abnormal endocrine environment that disrupts oviductal embryo transport. Theriogenology 54, 1117-1131.
Hamlin, M. Prionailurus viverrinus [online] 2004 [cited 2013 Aug 10]. Available from https://animaldiversity.ummz.umich.edu/accounts/Prionailurus_viverrinus/
Herrick, J.R., Bond, J.B., Campbell, M., Levens, G., Moore, T., Benson, K., et al. 2010. Fecal endocrine profiles and ejaculate traits in black-footed cats (Felis nigripes) and sand cats (Felis margarita). Gen Comp Endocrinology 165, 204–214.
Khonmee, J., Vorawattanatham, N., Pinyopummin, A., Thitaram, C., Somgird, C., Punyapornwithaya ,V., Brown, J.L . 2016. Assessment of faecal glucocorticoid metabolite excretion in captive female fishing cats (Prionailurus viverinus) in Thailand. Conservation Physiology 4(1): cow021. doi:10.1093/ conphys/cow021.
Kitchener, A.C. 1991. The natural history of the wild cats. Christopher Helm: London.
Lekagul, B., McNeely, J.A. 1988. Mammals of Thailand. 2nd ed. Bangkok: Association for the Conservation of Wildlife.
Moreira, N., Monteiro-Filho, E.L., Moraes, W., Swanson, W.F., Graham, L.H., Pasquali, O.L., et al. 2001. Reproductive steroid hormones and ovarian activity in felids of the Leopardus Genus. Zoo Biology 20(2), 103-116.
Mukherjee, S., Sanderson, J., Duckworth, W., Melisch, R., Khan, J., Wilting, A., et al. Prionailurus viverrinu [online] 2010 [cited 30 Aug 2013] Available from: https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2008.RLTS.T18150A7673993.en
Nowell, K., Jackson, P. 1996. Wild Cats Status Survey and Conservation Action Plan. Cambridge UK: The Burlington Press.
Palm, R., Fischer, P., Schildorfer, H., Iswmall, M.N. 1996. Excretion of infuse 14C-steroid hormone via faeces and urine in domestic livestock. Animal Reproduction 43, 43-63.
Patumrattanathan, S. 2015. Ecology of fishing cat (Prionailurus viverrinus) by community participation on its conservation in Kui Buri district, Prachuap Khiri Khan province, Thailand. Doctor of Philosophy (Sustainable Land Use and Natural Resources Management), Major Field: Sustainable Land Use and Natural Resources Management, Interdisciplinary Graduate Program. Graduate School, Kasetsart University. 162 p.
Pelican, K.M., Brown, J.L., Wildt, D.E., Ottinger, M.A., Howard, J.G. 2005. Short term suppression of follicular recruitment and spontaneous ovulation in the cat using levonorgestrel versus a GnRH antagonist. General and Comparative Endocrinology 144(2), 110-121.
Santymire, R.M., Brown, J.L., Stewart, R.A., Santymire, R.C., Wildt, D.E., Howard, J. 2011, Reproductive gonadalsteroidogenic activity in the fishing cat (Prionailurus viverrinus) assessed by fecal steroid analyses. Animal Reproduction 128, 60-72.
Tantipisanuh, N., Chutipong, W., Ngoprasert, D., Lynam, A.J., Sukmasuang, R., Jenks, K.J.G., et al. 2010. Status and distribution of small carnivores in Thailand. Abstracts in Thailand Wildlife Seminar 31st. 50 years To Celebrate the Golden Jubilee of Thai Wildlife Conservation. Faculty of Forestry, Kasetsart University.16-17 December 2010. 20-22.
