Efficacy and shelf life of Lysinibacillus sphaericus cultured with household waste against Culex quinquefasciatus
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
This study aimed to determine the efficacy of Lysinibacillus sphaericus cultured from household waste culture materials, including soy pulp water, mature coconut water, and rice washing water. Each test medium was supplemented with sugar at concentrations of 0%, 2.5%, and 5%, and then tested against the early fourth instar larvae of the laboratory strain (NIH strain) of Culex quinquefasciatus. The results showed that soy pulp water without added sugar was the most effective in controlling the mosquito larved, with LC50 of 0.42 ppm when compared with mature coconut water and rice washing water. In a study on storage stability, L. sphaericus from soy pulp water was stored at temperatures of 23-28 ºC and 25-35 ºC for 12 months. The results showed that storage of L. sphaericus stored at 23-28 ºC was more effective against Cx. quinquefasciatus larvae than when stored at 25-35 ºC. Therefore, soy pulp could be considered a cost-effective medium for economical production of L. sphaericus toxins, and L. sphaericus should be stored at temperatures between 25-35 ºC to maintain its efficacy against Cx. quinquefasciatus larvae throughout the year).
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ข้อลิขสิทธิ์วารสาร
บทความหรือข้อคิดเห็นใดๆ ที่ปรากฏในวารสารวิชาการป้องกันควบคุมโรค สคร. 2 พิษณุโลก เป็นวรรณกรรมของผู้เขียน กองบรรณาธิการวิชาการ และ สำนักงานป้องกันควบคุมโรคที่ 2 จังหวัดพิษณุโลกไม่จำเป็นต้องเห็นพ้องด้วยทั้งหมดหรือร่วมรับผืิดชอบใดๆ
References
Singh PK. Elimination of infectious diseases from the South-East Asia Region: keeping the promise. Singapore: Springer; 2021.
Sudjaritruk T, Kaewpoowat Q, Prasarakee C, Sarachai S, Taurel AF, Sricharoen, et al. Seroepidemiological study of Japanese encephalitis virus in Chiang Mai: Immunity and susceptibility 28 years after introduction of a vaccination programme. PLOS Negl Trop Dis. 2022;16(8):e0010674.
Gan SJ, Leong YQ, bin Barhanuddin MFH, Wong ST, Wong SF, Mak JW, et al. Dengue fever and insecticide resistance in Aedes mosquitoes in Southeast Asia: a review. Parasites & Vectors. 2021;14(1):315.
Lacey LA. Bacillus thuringiensis serovariety israelensis and Bacillus sphaericus for mosquito control. Journal of the American Mosquito Control Association. 2007;23(sp2): 133-63, 31.
Prades A, Dornier M, Diop N, Pain J. Coconut water uses, composition and properties: A review. Fruits. 2012;67(2):87-107.
Osazuwa OE, Ahonkhai I. Coconut water as growth medium for micro-organisms. Niger J Palms Oil Seeds. 1989;10(11):91-5.
Chilcott CN, Pillai JS. The use of coconut wastes for the production of Bacillus thuringiensis var. israelensis. World J Microbiol Biotechnol. 1985;1:327-32.
Prabakaran G, Hoti SL, Manonmani AM, Balaraman K. Coconut water as a cheap source for the production of -endotoxin of Bacillus thuringiensis var. israelensis, a mosquito control agent. Acta Trop. 2008;105(1):35-8.
Yadav K, Dhiman S, Baruah I, Singh L. Development of cost effective medium for production of Bacillus sphaericus strain isolated from Assam, India. Microbiol J. 2011;1:65-70.
Sekar N, Veetil SK, Neerathilingam M. Tender coconut water an economical growth medium for the production of recombinant protein in Escherichia coli. BMC Biotechnol. 2013; 13:70.
อัญชลี อุษณาสุวรรณกุล, กัญญ์วรา ทองกระจ่าง. การใช้ประโยชน์จากกากถั่วเหลือง. วารสารวิจัยและพัฒนาผลิตภัณฑ์อาหาร. 2565;52(1):24-36.
Akiihiro O, Takashi A, Makoto S. Use of soybean curd residue, Okara, for the solid state substrate in the production of lipopeptide antibiotic, Iturin A, by Bacillus subtilis NB22. Process biochem. 1996;31(8):801-6.
Yokata T, Hottori T, Ohishi H, Ohami H, Watanabe K. Effect of oral administration of crude antioxidant preparation from fermented products of Okara (Bean Curd Residue) on experimentally induced inflammation. LWT - Food Sci. Technol. 1996;29(4):304-9.
Marto J, Neves Â, Gonçalves LM, Pinto P, Almeida C, Simões S. Rice Water: A traditional ingredient with anti-aging efficacy. Cosmetics. 2018;5(2):26.
Tu NHK, Trang PTT. Effects of rice-washing water on the hyaluronic acid production of Streptococcus thermophilus. In: Toi V, Toan N, Dang KT, Lien PT, editors. 4th International Conference on Biomedical Engineering in Vietnam 2012: IFMBE Proceedings; 2012 Jan 8-12; Ho Chi Minh, Vietnam. Berlin: Springer; 2013. p. 168-70.
เลาจนา เชาวนาดิศัย, สุวิทย์ ธนศรีภักดีกุล, ศิริพรรณ วงศ์วานิช, สุนันทา รามศิริ. แบคทีเรียจากจังหวัดพระนครศรีอยุธยามีประสิทธิภาพฆ่าลูกน้ำยุง. วารสารกรมวิทยาศาสตร์การแพทย์. 2538;37(3):187-95.
ทรงพล ชีวะพัฒน์, ปราณี ชวลิตธำรง, สมเกียรติ ปัญญามัง, สดุดี รัตนจรัสโรจน์, เลาจนา เชาวนาดิศัย. พิษกึ่งเรื้อรังของแบคทีเรียก่อโรคในแมลง แบซิลลัส สเฟียริคัส เอช-5 สายพันธุ์อยุธยา.
วารสารกรมวิทยาศาสตร์การแพทย์. 2542;41(3):305-13.
Finney DJ. Probit analysis. Cambridge: Cambridge University Press; 1971.
Abbott WSA. Method of computing effectiveness of insecticide. J Econ Entomol. 1925;18:265-7.
Hu X, Fan W, Han B, Liu H, Zheng D, Li Q, et al. Complete genome sequence of the mosquitocidal bacterium Bacillus sphaericus C3-41 and comparison with those of closely related Bacillus species.
J Bacteriol. 2008;190(8):2892-902.
Gómez-Garzón C, Hernández-Santana A, Dussán J. A genome-scale metabolic reconstruction of Lysinibacillus sphaericus unveils unexploited biotechnological potentials. PLoS One. 2017;12(6): e0179666
Kudełka W, Kowalska M, Popis M. Quality of Soybean Products in Terms of Essential Amino Acids Composition. Molecules. 2021;26(16):5071.
Wang J, Jonkers HM, Boon N, De Belie N. Bacillus sphaericus LMG 22257 is physiologically suitable for self-healing concrete. Appl Microbiol Biotechnol. 2017;101(12):5101-14.
El-Bendary MA, Moharam ME, Foda MS. Efficient mosquitocidal toxin production by Bacillus sphaericus using cheese whey permeate under both submerged and solid-state fermentations.
J Invertebr Pathol. 2008;98(1):46-53.
