ผลของยีน sD ต่อการแสดงออกของแอนติเจน s
คำสำคัญ:
หมู่โลหิต MNS, แอนติเจน sD, แอนติเจน sบทคัดย่อ
บทคัดย่อ
หมู่โลหิต MNS มีความสำคัญทางคลินิกในประชากรไทย ซึ่งแตกต่างจากชาวผิวขาว ซึ่งแอนติเจนควบคุมโดยยีน GYPA และ GYPB ที่มีความใกล้เคียงกันมาก ทำให้เกิดลักษณะ gene conversion จากการเปลี่ยนแปลงลำดับเบส (single nucleotide polymorphism; SNPs) หรือการแลกเปลี่ยนระหว่างยีน (hybrid gene) ส่งผลให้มีความหลากหลายของแอนติเจนสูง การตรวจแอนติเจนหมู่โลหิต MNS จึงมีความซับซ้อนเพิ่มขึ้น จำเป็นต้องเฝ้าระวังผลที่ผิดปกติ และตรวจยืนยันด้วยเทคนิคระดับโมเลกุลเพิ่มเติม เพื่อให้ได้ผลที่ถูกต้อง sD เป็นแอนติเจนในหมู่โลหิต MNS ลำดับที่ 23 ซึ่งเกิดจาก SNPs c.173C > G บนยีน GYPB โดยจัดอยู่ในกลุ่ม low-incidence antigen คือ มีความถี่น้อยกว่าร้อยละ 1 ในประชากร อย่างไรก็ตามการศึกษาความถี่ในคนไทย โดยใช้เทคนิคทางซีโรโลยีพบว่า ความถี่ของแอนติเจน sD ในตัวอย่างผู้บริจาคโลหิตหมู่ O คือร้อยละ 2 และมีรายงานแอนติบอดีสามารถทำให้เกิดโรคเม็ดเลือดแดงแตกในทารกแรกเกิดอย่างรุนแรงอีกด้วย นอกจากนี้พบว่า เซลล์เม็ดเลือดแดงที่เป็น sD+ ทำให้เกิดการแสดงออกของแอนติเจน s อ่อนลงกว่าการแสดงออกในเซลล์เม็ดเลือดแดงทั่วไป ผู้บริจาคโลหิตชาวไทยรายหนึ่งพบผลการตรวจแอนติเจน s ให้ผลไม่สอดคล้องกันระหว่างการตรวจด้วยน้ำยาสำเร็จรูปที่ต่างโคลนกัน ผลการทดสอบด้วยเทคนิคอณูชีววิทยาด้วยน้ำยาสำเร็จรูปแปลผลแอนติเจน s+ จึงทำการทดสอบ Sanger sequencing พบว่าผู้บริจาคโลหิตรายนี้มี รูปแบบยีนของ GYPB*sD allele แบบ homologous ซึ่งเป็นสาเหตุที่ทำให้เกิดผลไม่สอดคล้องกันในการตรวจแอนติเจน s นี้ รายงานนี้จึงเป็นรายงานแรกที่มีการกล่าวถึงรูปแบบยีน GYPB*sD allele ในระดับ homozygous ในคนไทย ที่ทำให้เกิดผลลบปลอมในการตรวจแอนติเจน s ด้วยน้ำยา monoclonal anti-s clone P3YAN3
Abstract:
The MNS blood group system is considered clinically significant in the Thai population, which differs from that observed in the Caucasian populations. It is governed by the highly homologous GYPA and GYPB genes, with high polymorphism from various single nucleotide polymorphisms (SNPs) or gene conversion (hybrid genes). Antigen testing for the MNS blood group system is increasingly intricate and requires vigilance in monitoring for abnormal results, followed by molecular confirmation to ensure accuracy. The sD antigen, designated as the MNS23 antigen encoded by c.173C > G of the GYPB gene is classified as a low-incidence antigen with a frequency below 1%. However, serological studies of Thai individuals revealed an sD antigen frequency of approximately 2% among random group O blood donors. Notably, sD antigen has been reported to cause severe hemolytic disease of the fetus and newborn (HDFN). In addition, sD+ red blood cells are associated with altered s antigen expression compared to standard s+ red blood cells. It is crucial to confirm that blood donors do not possess antigens corresponding to the patient’s antibodies before transfusion. A Thai blood donor was observed to have discrepancy s phenotyping using different monoclonal anti-s and molecular technique using commercial kit showed s+ phenotype. Sanger sequencing was performed and revealed this donor has homozygous GYPB*sD allele as the cause of discrepancy results. This report is the first to describe the homozygous GYPB*sD allele causing false negative s phenotyping using monoclonal anti-s clone P3YAN3 in the Thai population.
Downloads
เอกสารอ้างอิง
Reid ME, Lomas-Francis C, Olsson ML. The blood group antigen: FactsBook. 3rd ed. Boston: Academic Press; 2012:731-45.
Lublin DM. Functional roles of blood group antigens. In: Silberstein LE, editor. Molecular and functional aspects of blood group antigens. Bethesda, MD: American Association of Blood Banks; 1995;163-92.
Allaway GP, Burness AT. Site of attachment of encephalomyocarditis virus on human erythrocytes. J Virol. 1986;59:768-70.
Palacajornsuk P. Review: molecular basis of MNS blood group variants. Immunohematology. 2006;22:171-82.
Halls J, Vege S, Aeschlimann J, Floch A, Mah HH, Lebo MS, et al. Automated analysis of whole genomes to interpret com-plex and uncommon MNS alleles. Transfusion. 2021;61(Suppl 3):115A [Abstract P-IG-3].
Storry JR, Reid ME, MacLennan S, Lubenko A, Nortman P. The low-incidence MNS antigens M(v), s(D), and Mit arise from single amino acid substitutions on GPB. Transfusion. 2001;41:269–75.
Lopez GH, Emthip M, Suwanwootichai P, Millard GM, Wilson B, Onpuns S, et al. Hemolytic disease of the fetus and newborn caused by anti-sD antibody in a GP.Mur/Mur Thai mother and review of the prevalence of sD in Thai blood donors. Transfusion. 2022;62:2137-42.
Wei L, Zhu S, Wen J, Liao Z, Luo G, Ji Y. The study of variant s antigen expression revealing a novel c.160C>T (p.Arg54Cys) variant on GYPB*s allele associated with partial s phenotype. Transfusion. 2024;64:380-7.
Compliance Program Guidance Manual, Chapter 42 – Blood and Blood Components, Inspection of Licensed and Unlicensed Blood Banks, Brokers, Reference Laboratories, and Contractors – 7342.001, June 1, 2016. Available from: cited on https://www.gmp-compliance.org/files/ guidemgr/ucm337001.pdf.
FDA “Guidance for Industry: Availability of FDA’s eSubmitter Program for Regulatory Submissions from Licensed Blood Establishments,” August 2011. Available from: cited on https://www.fda.gov/vaccines-blood-biologics/biologics-guidances/blood-guidances.
Cohn C, Delaney M, Johnson S, editors. Technical manual. 21st ed. Bethesda, MD: American Association of Blood Banks; 2023.
Lopez GH, Wilson B, Liew YW, Kupatawintu P, Emthip M, Hyland CA, et al. An alloantibody in a homozygous GYP*Mur individual defines JENU (MNS49), a new high-frequency antigen on glycophorin B. Transfusion. 2017;57:716-7.
Nathalang, O. Red cell genotyping in Thailand: trends for blood transfusion in Asian populations. VOXS. 2020;15:310-4.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2025 วารสารโลหิตวิทยาและเวชศาสตร์บริการโลหิต

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.