ผลของระยะเวลาในการแช่นํ้าและอุณหภูมิการแช่นํ้าต่อปริมาณสารไอโซฟลาโวนในถั่วเหลือง
Main Article Content
บทคัดย่อ
ไอโซฟลาโวนถูกนำมาใช้อย่างกว้างขวางในการเป็นฮอร์โมนทดแทน และมีข้อแนะนำใช้ในการรักษาโรคเรื้อรังหลายชนิดรวมทั้งโรคมะเร็ง ไอโซฟลาโวนที่พบในถั่วเหลืองและผลิตภัณฑ์แปรรูปจากถั่วเหลืองมีสัดส่วนและปริมาณของสารไอโซฟลาโวนแตกต่างกัน ทั้งนี้ขึ้นกับหลายปัจจัย ได้แก่ พันธุ์พืช สภาวะการปลูก ระยะการเก็บ รวมถึงขั้นตอนการแปรรูป สารเจนิสเตอีนเป็นไอโซฟลาโวนชนิดอะกลัยโคนที่พบมากที่สุดในสารสกัดถั่วเหลือง ซึ่งสารนี้สามารถอยู่ในรูปของกลัยโคไซด์ คือ เจนิสตินด้วย งานวิจัยนี้ทำการตรวจสอบความถูกต้องของวิธีวิเคราะห์ RP-HPLC ซึ่งใช้ระบบเกรเดียนในการหาปริมาณสารเจนิสเตอีนและเจนิสตินในถั่วเหลืองที่ผ่านการแช่น้ำที่ ระยะเวลาและอุณหภูมิต่างๆ จากการทดลองพบว่าปริมาณเจนิสเตอีนเพิ่มขึ้นตามระยะเวลาการแช่น้ำที่เพิ่มขึ้น และอุณหภูมิการแช่น้ำที่เพิ่มขึ้น ในขณะที่ปริมาณของเจนิสตินลดลง พบว่าปริมาณเจนิสเตอีนที่เพิ่มขึ้นเกิดจากปฏิกิริยาไฮโดรไลซิส โดยปฏิกิริยาไฮโดรไลซิสที่อุณหภูมิ 25 °C เกิดจากการทำงานของเอนไชม์เบต้ากลัยโคซิเดส ที่เปลือกด้านในของเมล็ด ในขณะที่ปฏิกิริยาไฮโดรไลซิสที่ 60°C เกิดจากการทำลายพันธะกลัยโคซิดิคด้วยความร้อน พบว่าปัจจัยด้านอุณหภูมิมีผลต่อปริมาณอะกลัยโคนมากกว่าปัจจัยด้านระยะเวลาการแช่นํ้า
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Adlercreutz H, Goldin BR, Gorbach SL. 1995. Soybean phytoestrogen intake and cancer risk. J Nutr 125: 757S-770S.
Chien JT, Hsieh HC, Kao TH, et al. 2005. Kinetic model for studying the conversion and degradation of isoflavones during heating. Food Chem 91: 425-434.
Coward L, Barnes NC, Setchell KD, et al. 1993. Genistein, daidzein and their b-glycoside conjugates: antitumor isoflavones in soybean foods from American and asian diets. J Agric Food Chem 41: 1961-1967.
Coward L, Smith M, Kirk M, et al. 1998. Chemical modification of isoflavone in soyfoods during cooking and processing. Am J Clin Nutr 68: 1486-91.
Imizu T, Piskula MK, Osawa S, et al. 2000. Soy isoflavone aglycones are absorbed faster and in higher amounts than their glucosides in humans. J Nutr 130: 1695-99.
Jackson C, Dini JP, Lavandier C, et al. 2002. Effect of processing on the content and composition of isoflavones during manufacturing of soy beverage and tofu. Proc Biochem 37: 1117- 1123.
Kao TH, Lu YF, Hsieh HC, et al. 2004. Stability of isoflavone glucosides during processing of soymilk and tofu. Food Res Int 37: 891-900.
Kenneth DRS, Nadine MB, Kinda ZN, et al. 2002. Evedence for lack of absorption of soy isoflavone glycosides in human, supporting the crucial role of intestinal metabolism for bioavailability. Am J Clin Nutr 76: 447-53.
Kudou S, Fleury Y, Welti D, et al. 1991. Malonyl isoflavone glycosides in soybean seeds (Glycine max Merrill). Agri Biol Chem 155: 2227- 2233.
Matsuura M, Obata A. 1993. β-glucosidases from soybeans hydrolyze daidzin and genistin. J Food Sci 58: 144-147.
Matsuura M, Sasaki J, Murao S. 1995. Studies on β-glucosidases from soybeans that hydrolyze daidzin and genistin: isolation and character-ization of an isozyme. Biosci Biotech Biochem 59: 1623-1327.
Pandjaitan N, Hettiarachy N, Ju ZY. 2000. Enrichment of genistein in soy protein concentrate with β-glucosidases. J Food Sci 65: 401-407.
Simonne AH, Smith M, Weaver DB, et al. 2000. Retention and changes of soy isoflavones and carotenoids in immature soybean seeds (Edamame) during processing. J Agric Food Chem 48: 6061-6069.
Walter ED. 1941. Genistin (an isflavone glucoside) and its aglycone, genistin, from soybeans. J Am Chem Soc 63: 3273- 6.
Wang H, Murphy PA. 1994. Isoflavone content in commercial soybean foods. J Agric Food Chem 42: 1666-1673.
Wang H, Murphy PA. 1996. Mass balance study of isoflavones during soybean processing. foods. J Agric Food Chem 44: 2377-2383.