การศึกษากลไกเพิ่มการซึมผ่านผิวหนังของลิโมนีนบรรจุในไลโปโซม ที่กักเก็บสารที่ชอบน้ำ
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: สารเพิ่มการซึมผ่านที่บรรจุในถุงอนุภาคไลโปโซมได้มีการรายงานว่าเป็นตัวพาสำหรับนำส่ง ตัวยาผ่านผิวหนัง วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้จึงเพื่อศึกษากลไกการเพิ่มการซึมผ่านของลิโมนีนที่บรรจุในไลโปโซม (LI) ต่อการนำส่งสารที่ชอบนำผ่านผิวหนัง วิธีดำเนินการวิจัย: โซเดียมฟลูออเรสซีน (NaFI) ถูกใช้เป็น โมเดลสารที่ชอบนำสำหรับบรรจุลงในถุงอนุภาคไลโปโซม จากนั้นทำการประเมินคุณสมบัติทางเคมีกายภาค ของสูตรตำรับไลโปโซม และศึกษาการซึมผ่านผิวหนังภายนอกร่างกาย โดยใช้เซลล์ศึกษาการซึมผ่านของฟรานซ์ โดยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องผ่าน (TEM) จะถูกนำมาใช้เพื่อดูภาพอนุภาคไลโปโซมที่ซึมผ่านเช้าสู่ ของเหลวส่วนล่าง ส่วนเครื่องฟลูเรียร์ทรานล์ฟอร์มอินฟราเรดสเปคโทรมิเตอร์ (FTIR) นำมาใช้เพื่อวัดการ เปลี่ยนแปลงของการจัดเรียงโครงสร้างของไขมันระหว่างเซลล์ของสตราตัมคอร์เนียม ผลการวิจัย: คุณสมบัติ ทางเคมีกายภาพของ LI แสดงขนาดอนุภาคเล็ก (40.59 นาโนเมตร) ความสามารถในการกักเก็บยาสูง และมี ความยืดหยุ่นของผนังกั้นสูงกว่าไลโปโซมที่ไม่มีลิโมนีน โดยการซึมผ่านผิวหนังของ NaFI ที่กักเก็บอยู่ใน LI พบค่าสูงกว่าสูตรตำรับที่ NaFI ไม่ได้กักเก็บใน LI, NaFI ที่กักเก็บในไลโปโซมที่ไม่มีลิโมนีน, และสารละลายของ NaFI ตามลำดับ ซึ่งภาพจาก TEM แสดงถุงอนุภาคของ LI ที่สามารถซึมผ่านผิวหนังเขำสู่ของเหลว ส่วนล่างได้ ส่วนผล FTIR ของสตราดัมคอร์เนียมที่ได้รับ LI แสดงการจัดเรียงโครงสร้างของไขมันที่อยู่ ระหว่างเซลล์ของตัวกั้นสตราตัมคอร์เนียมที่หลวมขึ้นอีกด้วย สรุปผลการวิจัย: การเพิ่มการซึมฝานผิวหนัง ของลิโมนีนที่บรรจุในไลโปโซมอาจเป็นผลมาจากการที่ LI เป็นตัวพาที่นำสิ่งตัวยาที่ถูกกักเก็บผ่านผิวหนัง นอกจากนี้ลิโมนีน (เป็นสารเพิ่มการซึมผ่าน) ส่งผลต่อการเปลี่ยนแปลงในส่วนของตัวกั้นของสตราตัมคอร์เนียม เป็นอย่างมาก นำไปสู่การเพิ่มการซึมผ่านผิวหนังของสารที่ชอบนำ
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Mura S, Manconi M, Sinico C, Valenti D, Fadda AM. Penetration enhancer-containing vesicles (PEVs) as carriers for cutaneous delivery of minoxidil. Int J Pharm, 2009, 380(1t2): 72-79.
Manconi M, Caddeo C, Sinico C, Valenti D, Mostallino MC, Biggio G, Fadda AM. Ex vivo skin delivery of diclofenac by transcutol containing liposomes and suggested mechanism of vesicle-skin interaction. Eur J Pharm Biopharm, 2011, 78(1): 27-35.
Dragicevic-Curic N, Scheglmann D, Albrecht V, Fahr A. Temoporfin-loaded invasomes: development, characterization and in vitro skin penetration studies. J Control Release, 2008, 127(1): 59-69.
El Maghraby GMM, Williams AC, Barry BW. Skin delivery of oestradiol from lipid vesicles: importance of liposome structure. Int J Pharm, 2000, 204(1t2): 159-169.
Jain S, Jain P, Umamaheshwari RB, Jain NK. Transfersomes--a novel vesicular carrier for enhanced transdermal delivery: development, characterization, and performance evaluation. Drug Dev Ind Pharm, 2003, 29(9): 1013-1026.
Badran M, Shazly G, El-Badry M. Effect of terpene liposomes on the transdermal delivery of hydrophobic model drug, nimesulide: Characterization, stability and in vitro skin permeation. Afr J Pharm Pharmacol, 2012, 6: 3018-3026.
Subongkot T, Ngawhirunpat T. Effect of liposomal fluidity on skin permeation of sodium fluorescein entrapped in liposomes. Int J Nanomedicine, 2015, 10: 4581-4592.
Touitou E, Dayan N, Bergelson L, Godin B, Eliaz M. Ethosomes novel vesicular carriers for enhanced delivery: characterization and skin penetration properties. J Control Release, 2000, 65(3): 403-418.
Cevc G., Blume G. Lipid vesicles penetrate into intact skin owing to the transdermal osmotic gradients and hydration force. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)! Biomembranes, 1992, 1104(1): 226-232.
Honeywell-Nguyen PL, Bouwstra JA. Vesicles as a tool for transdermal and dermal delivery. Drug Discov Today Technol, 2005, 2(1): 67-74.
Rangsimawong W, Opanasopit P, Rojanarata T, Ngawhirunpat T. Terpene-Containing PEGylated Liposomes as Transdermal Carriers of a Hydrophilic Compound. Bio Pharm Bull, 2014, 37(12): 1936t1943.