สารฟินอลิกและฟลาวานอยด์และฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียของสารสกัดเอทานอลของพรอพอลิส
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาคุณสมบัติของสารสกัดพรอพอสิสไทย เพื่อพัฒนาเป็นวัสดุปิดทับเนื้อเยื่อในของฟันมนุษย์ โดยนำพรอพอลิสที่ขูดได้จากรังผึ้งในจังหวัดหนองคายมาสกัดด้วย 95% เอทานอล วิเคราะห์ปริมาณฟลาโวนอยด์รวมโดยวิธี Aluminum chloride colorimetric method ร่วมกับวิธี 2,4- dinitrophenylhydrazine colorimeteric method วิเคราะห์ปริมาณฟีนอลิกรวมโดยวิธี Folin-Ciocalteau colorimetric method ผลการศึกษาสารสกัดพรอพอลิสไทยมีฟลาโวนอยด์เข้มข้นร้อยละ 10 (โดยน้ำหนักของสารสกัดพรอพอลิสไทย) และฟีนอลิกเข้มข้นร้อยละ 2.95 (โดยน้ำหนักของสารสกัดพรอพอลิสไทย) สารสกัดพรอพอลิสไทย สามารถต้านเชื้อเสตร็ปโตคอคคัสมิวแทนส์ และแลคโตบาซิลลัสคาเซไอ โดยความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งเชื้อเสตร็ปโตคอคคัสมิวแทนส์ และแลคโตบาซิลลัสคาเซไอ คือ 22.5 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร และ 11.25 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร ตามลำดับ และความเข้มข้นต่ำสุดที่ฆ่าเชื้อเสตร็ปโตคอคคัสมิวแทนส์ และแลคโตบาซิลลัสคาเซไอ คือ 45 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร สารสกัดพรอพอลิสไทยความเข้มข้น 90 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร ไม่เป็นพิษต่อเนื้อเยื่อในของฟันมนุษย์ที่เวลา 6, 12, 24 และ 72 ชั่วโมง ผลจากการศึกษานี้พบว่า สารสกัดพรอพอลิสไทยมีคุณสมบัติที่เหมาะสมในการพัฒนาเป็นวัสดุปิดทับเนื้อเยื่อในฟันมนุษย์ เนื่องจากสามารถฆ่าเชื้อเสตร็ปโตคอคคัสมิวแทนส์ และแลคโตบาซิลลัสคาเซไอซึ่งเป็นเชื้อที่พบบ่อยในเนื้อเยื่อในของฟันมนุษย์ที่ติดเชื้อ และไม่เป็นพิษต่อเซลล์เนื้อเยื่อในฟันมนุษย์
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Ahangari Z, Naseri M, Jalili M, et al. Effect of propolis on dentine regeneration and the potential role of dental pulp stem cell in Guinea pigs. Cell J (Yakhteh) Winter 2012; 13(4):223-228.
Al-Shaher A, Wallace J, Agarwal S, et al. Effect of propolis on human fibroblasts from the pulp and periodontal ligament. J Endod 2004; 30(5):359-361.
Bio-Rad Laboratories Inc. Cell counting [online] 2011 [cited 2014 Aug 4]. Available from: http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/Bulletin_6234.pdf
Burdock GA. Review of the biological properties and toxicity of bee propolis. Food Chem Toxicol 1998; 36(4): 347-363.
Chaipanha P (2013) Effect of Thai Propolis Crude Extract on the Cytotoxicity and Proliferation of Human Dental Pulp Cells, in vitro. Dissertation, Khon Kaen University
Chang CC, Yang MH, Wen HM, et al. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. J Food Drug Anal 2002; 10(3):178-182.
Chhour KL, Nadkarni MA, Byun R, et al. Molecular analysis of microbial diversity in advanced caries. J Clin Microbiol 2005; 43(2):843-849.
Clinical and Laboratory Standards Institute. Method for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically; approved standard; 2006. 7th edn. CLSI document M7 - A7. 26(2):1-49.
Cvek J, Medić-Sarić M, Jasprica I, et al. Optimisation of an extraction procedure and chemical characterisation of Croatian propolis tinctures. Phytochem Anal 2007; 18(5):451-459.
Daugsch A, Moraes CS, Fort P, et al. Brazilian red propolis--chemical composition and botanical origin. Evid Based Complement Alternat Med 2008; 5(4):435-441.
Featherstone JDB. Dental caries:a dynamic disease process. Aust Dent J 2008; 53(3):286-291.
Ikeno K, Ikeno T, Miyazawa C. Effects of propolis on dental caries in rats. Caries Res 1991; 25(5):347-351.
Kaewmuangmoon J, Nonthapa P, Rattanawannee A, et al. Preliminary screening for various bioactivities in honey and propolis extract from Thai bees. European J Med Plants 2012; 2(2):74-92.
Kakehashi S, Stanley HR, Fitzgerald RJ. The effects of surgical exposures of dental pulps in germ-free and conventional laboratory rats. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 1965; 20:340-349.
Kashi TSJ, Kermanshahi RK, Erfan M, et al. Evaluating the in-vitro antibacterial effect of Iranian propolis on oral microorganisms. Iran J Pharm Res 2011; 10(2): 363-368.
Kumazawa S, Hamasaka T, Nakayama T. Antioxidant activity of propolis of various geographic origins. Food Chem 2004; 84:329-339.
Libério SA, Pereira AL, Araújo MJ, et al. The potential use of propolis as a cariostatic agent and its actions on mutans group streptococci. J ethnopharmacol 2009; 125(1):1-9.
Martin FE, Nadkarni MA, Jacques NA, et al. Quantitative microbiological study of human carious dentinee by culture and real-time PCR: association of anaerobes with histopathological changes in chronic pulpitis. J Clin Microbiol 2002; 40(5):1698-1704.
McLennan SV, Bonner J, Milne S, et al. The anti-inflammatory agent Propolis improves wound healing in a rodent model of experimental diabetes. Wound Repair Regen 2008; 16(5):706-713.
Mejàre I, Cvek M. Partial pulpotomy in young permanent teeth with deep carious lesions. Endod Dent Traumatol 1993; 9(6):238-242.
Mello BCBS, Hubinger MD. Antioxidant activity and polyphenol contents in Brazilian green propolis extract prepared with the use of ethanol and water as solvents in different pH values. Int J Food Sci Tech 2012; 47(12):2510-2518.
Mohammadzadeh S, Shariatpanahi M, Hamedi M, et al. Chemical composition, oral toxicity and antimicrobial activity of Iranian propolis. Food Chem 2007; 103(4):1097-1103.
Munson MA, Banerjee A, Watson TF, et al. Molecular analysis of the microflora associated with dental caries. J Clin Microbiol 2004; 42(7):3023-3029.
Neelakantan P, Rao CV, Indramohan J. Bacteriology of deep carious lesions underneath amalgam restorations with different pulp-capping materials--an in vivo analysis. J Appl Oral Sci 2012; 20(2):139-145.
Nunes LCC, Galindo AB, Lustosa SR, et al. Influence of seasonal variation on antioxidant and total phenol activity of red propolis extract. Adv Stud Biol 2013; 5(3):119-133.
Ophori EA, Eriagbonye BN, Ugbodaga P. Antimicrobial activity of propolis against Streptococcus mutans. Afr J Biotechnol 2010; 9(31):4966-4969.
Parolia A, Kundabala M, Rao NN, et al. A comparative histological analysis of human pulp following direct pulp capping with Propolis, Mineral trioxide aggregate and Dycal. Aust Dent J 2010; 55(1):59-64.
Parolia A, Thomas MS, Kundabala M, et al. Propolis and its potential use in oral health. Int J Med Med Sci 2010; 2(7):210-215.
Siripatrawan U, Vitchayakitti W, Sanguandeekul R. Antioxidant and antimicrobial properties of Thai propolis extracted using ethanol aqueous solution. Int J Food Sci Tech 2013; 48(1):22-27.
Tziafas D, Smith AJ, Lesot H. Designing new treatment strategies in vital pulp therapy. J Dent 2000; 28(2): 77-92.
Uzel A, Sorkun K, Onçağ O, et al. Chemical compositions and antimicrobial activities of four different Anatolian propolis samples. Microbiol Res 2005; 160(2):189-195.
Vitchayakitti W, Siripatrawan U, Sanguandeekul R, editors. Total phenolic content and antimicrobial property of propolis from Nan province. The 35th Congress on Science and Technology of Thailand (STT35); 2009. Burapha University, Thailand.
