การเปรียบเทียบการซึมผ่านแผ่นกั้นผิวหนังคนกับหมูในหลอดทดลองของสารพอลิฟีนอลจากพืช
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: การศึกษาเปรียบเทียบผิวหนังหมูกับคนที่ใช้เป็นแผ่นกั้นการทดสอบการซึมผ่านของพอลิฟีนอลซึ่งมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระจากสารสกัดของพืชซึ่งใช้เพิ่มมูลค่าของเครื่องสำอางวัสดุและวิธีการทดลอง: ผิวหนังจากหูหมูกับผิวหนังคนสารสกัดพืช 7 ชนิด คือ ดาหลา (EE) กุหลาบมอญ (RD) บัวผุด (RK) สมอไทย (TC) สมอพิเภก (TB) อัญชัน (CT) กุหลาบแดง (RH) ทำการซึมผ่านเยื่อกั้นด้วยหลอดทดสอบการซึมผ่านที่อุณหภูมิ 32oC นำตัวอย่างมาวัดสีด้วยวิธีการโฟลินซิโอ-คาลโชที่ความยาวคลื่น 765 นาโนเมตรเทียบกับสารมาตรฐานคือกรดแกลลิก ผลการศึกษา: ความเข้มข้นตั้งต้นในส่วนให้ของ EE, RD, RK, TC, TB, CT และRH 5, 13.5, 56, 42, 37, 3.6 and 8.9 mg GAE·ml-1 ตามลำดับ ความเข้มข้นตั้งต้นของพอลิฟีนอลในส่วนให้กับอัตราการซึมผ่านเข้าสู่ส่วนรับของพอลิฟีนอลจากสารสกัดทั้ง 7 ชนิดนี้เมื่อใช้ผิวหนังหมูเป็นแผ่นกั้นมีแนวโน้มความสัมพันธ์เป็นเส้นตรง (r = 0.8255) แต่เมื่อใช้ผิวหนังคนพบว่าไม่เป็นเส้นตรง (r = 0.3207) เวลาเริ่มต้นในการซึมผ่านผิวหนังคนประมาณ 12 - 22 ชั่วโมง แต่ผิวหนังหมูเริ่มซึมผ่านตั้งแต่เริ่มการทดสอบแสดงถึงความแตกต่างของการซึมผ่านทั้งอัตราและเวลาเริ่มต้น สรุปผล: การใช้ผิวหนังหมูไม่อาจทดแทนการใช้ผิวหนังคนในการทดสอบการซึมผ่านของพอลิฟีนอลจากสารสกัดพืชที่มีปริมาณต่ำมาก
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Akomeah F, Nazir T, Martin GP, Brown MB. Effect of heat on the percutaneous absorption and skin retention of three model penetrants. Eur J Pharm Sci 2004; 21(2-3): 337-345.
Barry BW. Review Novel mechanisms and devices to enable successful transdermal drug Delivery. Eur J Pharm Sci 2001; 14: 101 -114.
Chulasiri M, Wanaswas P, Sriaum D, et al., Utilizing hydroglycolic extract from myrobalan fruits to counteract reactive oxygen species. Int J Cosmetic Science 2011; 33:371-376.
COLIPA. Guidelines for percutaneous absorption/ penetration. In: Macmillan R. editor. 2nd Edition, The European Cosmetic, Toiletry and Perfumery Association. Brussel: Belgium; 1997.
Dick IP, Scott RC. Pig ear skin as an in vitro model for human skin permeability. J Pharm Pharmacol 1992; 44: 640-645.
Diembeck W, Bekc H, Benech-KieVer F, Courtellemonth P, Dupuis J, Lovell W, et al. Test guidelines for in vitro assessment of dermal absorption and percutaneous penetration of cosmetic ingredients. Food ChemToxicol 1999; 37: 191-205.
European Commission. Folin-Ciocalteu Index (OIV-AJ-2-10-INDFOL)-Category IV method. Official Journal of the European Union 2010; 43/01: 12-13.
Gabbanini S, Lucchi E, Carli M, Berlini E, Minghetti A, Valgimigli L. In vitro evaluation of the permeation through reconstructed human epidermis of essentials oils from cosmetic formulations. J Pharm Biomed Anal 2009; 50: 370-376.
Javanmardi J, Stushnoff C, Locke E, Vivanco JM. Antioxidant activity and total phenolic content of Iranian Ocimum accessions. Food Chem-istry 2003; 83: 547-550.
Kanikkannan N, Kandimalla K, Lamba SS, Singh M. Structure-activity relationship of chemical penetration enhancers in transdermal drug delivery. Curr Med Chem 2000; 7: 593-608.
Kovatcheva-Apostolova EG, Georgiev MI, Ilieva MP, Skibsted LH, Rødtjer A, Andersen ML. Extracts of plant cell cultures of Lavandulavera and Rosa damascena as sources of phenolic antioxidants for use in foods. Eur Food Res Technol 2008; 227: 1243-1249.
Malhotra S, Subban R, Singh A. Lichens-role in traditional medicine and drug discovery. Internet J Alternative Med 2008; 5(2).
Meyer W, Schwarz R, Neurand K. The skin of domes-tic mammals as a model for the human skin, with reference to the domestic pig. Curr Prob Dermatol 1987; 7: 39-52.
Priprem A, Khamlert C, Pongjanyakul T, Radapong S, Rittirod T, Chitropas P. Comparative permeation studies between scale region of shed snake skin and human skin in vitro. Am J Agri Biol Sci 2008; 3(1): 444-450.
Santos-Buelga C, Scalbert A. Proantocyanidins and tannin-like compounds: nature, occurrence dietary intake and effects on nutrition and health. J Sci Food Agric 2000; 80(7): 1094-1117.
Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Vitic 1965; 16:144-158.
Waterhouse AL. Determination of total phenolics. In: Wrolstad ERE, editor. Current protocols in food analytical chemistry. New York: Wiley; 2002.
Williams AC, Barry BW. Penetration enhancers. Adv Drug Delivery Rev 2004; 56(5): 603-618.
Yim HS, Chye FY, Ho SK, Ho CW. Phenolic profiles of selected edible wild mushrooms as affected by extraction solvent, time and temperature. As J Fd& Agro-Ind 2009; 2(3): 371-380.
Zheng W, Wang SY. Antioxidant activity and phenolic compounds in selected herbs. J Agric Food Chem 2001; 49(11): 5165-70.
