การพัฒนาผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางจากใบมะรุมที่พบในชุมชนศรีภูมิในพื้นที่ฝั่งธนบุรี
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ปัจจุบันประชาชนหันมาดูแลสุขภาพกันมากขึ้น และสนใจการใช้สมุนไพรเพื่อบำรุงผิว งานวิจัยนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนาผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางจากสารสกัดสมุนไพรซึ่งพบในชุมชนศรีภูมิที่ให้การออกฤทธิ์ต้านออกซิเดชัน วิธีดำเนินงานวิจัย: เตรียมสารสกัดจากสมุนไพร 4 ชนิด โดยการต้มและหมักด้วยเอทานอล ศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH, ABTS และความสามารถในการรีดิวซ์ด้วยวิธี FRAP คัดเลือกสารสกัดที่ต้านอนุมูลอิสระสูงสุดเพื่อพัฒนาตำรับเจล ศึกษาคุณสมบัติทางกายภาพและทางเคมีของตำรับ ได้แก่ ลักษณะ สี กลิ่น ความหนืด ความเป็นกรดด่าง ประสิทธิภาพการต้านอนุมูลอิสระ DPPH เมื่อเก็บที่สภาวะเร่งและที่อุณหภูมิ 45 ๐C เป็นเวลา 3 เดือน ผลการศึกษาวิจัย: สารสกัดใบมะรุมสกัดด้วยน้ำแสดงฤทธิ์ต้านออกซิเดชันด้วยวิธี DPPH, ABTS และ FRAP สูงสุด ให้ค่า IC50, VEAC และ FRAP value เท่ากับ 99.28 ± 3.47 µg/mL, 2.40 ± 0.01 mM ascorbic acid/g และ 14.80 ± 0.59 mM Fe2+/g ตามลำดับ ดังนั้นจึงนำสารสกัดน้ำจากใบมะรุมมาพัฒนาผลิตภัณฑ์เจลบำรุงผิวต้านอนุมูลอิสระ และศึกษาความคงตัวของตำรับในสภาวะเร่ง ด้วยวิธี hot and cold temperature cycle และสภาวะเร่งระยะยาวที่อุณหภูมิ 45 ๐C พบว่า สภาวะเร่งในรอบที่ 8 ตำรับมีความคงตัวทางเคมีโดยให้ค่าการต้านอนุมูลอิสระ DPPH ไม่แตกต่างกันกับค่าเริ่มต้น (IC50 = 138.04 ± 3.84 µg/mL) และในสภาวะเร่งระยะยาวตำรับที่ผสมสารสกัดใบมะรุมมีความคงตัวทางเคมีและทางกายภาพดีเมื่อเทียบกับตำรับควบคุม มีค่า IC50 อยู่ในช่วง 97.72 - 123.89 µg/mL ในระหว่างเวลา 90 วัน โดย ณ วันที่ 90 ประสิทธิภาพการต้านอนุมูลอิสระของเจล (IC50 = 104.71 ± 4.83 µg/mL) ลดลงอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) เมื่อเทียบกับเริ่มต้น (IC50 = 97.72 ± 5.25 µg/mL) ดังนั้นตำรับนี้จะมีความคงตัวในช่วงระยะเวลา 3 เดือน สรุปผลการวิจัย: สารสกัดน้ำจากใบมะรุมมีประสิทธิภาพในการต้านอนุมูลอิสระและมีความเหมาะสมในการพัฒนาตำรับเจลบำรุงผิวต้านอนุมูลอิสระ
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
AmornlerdpisonD, et al. Anti-oxidant activity of Sargassum polycystumC. Agardh. J Fisheries Technology Res2006; 2(2): 96-103.
Benzie IFF. and Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power” the FRAP assay. Analytical Biochemistry1996; 239: 70-76.
Charrouf Z. and Guillaume D. Phenols and polyphenols from Argania spinosa. Am. J. Food Tech2007; 2(7): 679-683.
Chumark P, Khunawat P, Sanvarinda Y, Phornchi-rasilp S, Morales NP, Phivthong-ngame L, Ratanachamnong P, Srisawatf S, Klai-upsorn S. and Pongrapeeporn G. The in vitroand ex vivoantioxidant properties, hypolipidaemic and antiatherosclerotic activities of water extract of Moringa oleiferaLam. leaves. J Ethnopharmacology2008;116(3): 439-446.
Fahey JW. Moringa oleifera: A review of the medi-cal evidence for its nutritional, therapeutic, and prophylactic properties. part 1. TFL Journal. Retrieved August 8, 2016, from http://www.tfljournal.org/images/articles/20051201124931586_3.pdf
Igbo UE, Igoli JO, Onyiriuka SO, Ejele AE, Ogukwe CE, Ayuk AA, Elemo GN. and Gray AI. Antitrypanosomal and antioxidant activities of Moringa oleiferalam leaf extracts. JPCBS2015; 3(1): 17-23.
Jirum J. and Srihanam P. Oxidants and antioxidants: sources and mechanism. Acad. J. Kalasin Rajabhat University2011; 1(1): 59-70.
Kehinde I. and Abass OO. Compositional investigation of phytochemical and antioxidant properties of various parts of moringa oleifera plant. EJBAS2015; 2(2): 1-10.
Langseth L. Oxidants, antioxidants, and disease prevention. ILSI Europe; 1995. Nakabeppu Y, et al. Mutagenesis and carcinogene-sis causedby the oxidation of nucleic acids. J. Biol. Chem2006;387: 373-382.
Nigam R, Ayachi A. and Verma KS. The antioxidant potential of phenolic compounds from the leaves of moringa oleifera collected from jabalpur (india). EJBPS2016; 3(3): 532-536.
Panruksa D. and Jimtaisong A. Antioxidant efficiency by DPPH technique of serum with white tea extract. Mae Fah Luang University; 2013.
Phansawan B. Free radicals, antioxidants and antioxidant activity determination. J Science and Technology2011; 21(3): 275-286.
Rakwathin J. Approach for light stability testing of drugs. Bangkok, Niyomvittaya 1997.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M. and Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. JFree Radic Biol Med1999; 26: 1231-1237.
Scott DA, et al. The in-fluence of vitamin C on systemic markers of endothelial and inflammatory cell activation in smokers and non-smokers. J Inflamm Res2005; 54: 138–144.
Valko M, et al. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. Intl J Biochem Cell Biol 2007; 39: 4484-4489.
