การวิเคราะห์หาปริมาณของพลัมบาจินในสารสกัดรากเจตมูลเพลิงแดงด้วยเทคนิค โครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงวัฎภาคย้อนกลับ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
พลัมบาจิน (5-hydroxy-2-methyl-1,4-naphthoquinone) เป็นสารสีเหลืองในกลุ่มควิโนนอยด์ที่มีฤทธิ์ทางชีววิทยาหลากหลาย พบได้มากในรากของเจตมูลเพลิงแดง หรือ Plumbago indica L. ซึ่งเป็นพืชสมุนไพรที่ถูกใช้เป็นยาแผนโบราณเพื่อรักษาโรคมากมาย วัตถุประสงค์: การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนาและประเมินวิธีวิเคราะห์ปริมาณของพลัมบาจินโดยใช้เทคนิคโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงวัฎภาคย้อนกลับ (RP-HPLC) วิธีวิเคราะห์ที่ผ่านการประเมินถูกนำไปใช้หาปริมาณพลัมบาจินในสารสกัดหยาบของรากเจตมูลเพลิงแดง วิธีการทดลอง: ระบบ RP-HPLC ประกอบด้วยคอลัมน์ชนิด C18 เป็นวัฎภาคคงที่และวัฎภาคเคลื่อนที่เป็นอะซีโทไนไตรล์และน้ำ (50:50 โดยปริมาตร) ที่กำหนดอัตราการไหลเท่ากับ 1 มิลลิลิตรต่อนาที และตรวจวัดพลัมบาจินที่ความยาวคลื่น 254 นาโนเมตร ผลการทดลอง: โครมาโทแกรมไม่พบพีคของสารรบกวนที่เวลารีเทนชั่น (retention time) ของพลัมบาจิน (tR = 6.2 นาที) และมีความสัมพันธ์เชิงเส้นตรงที่ดี (r2 = 0.99823) ขีดจำกัดของการตรวจวัด (LOD) และขีดจำกัดของการวิเคราะห์ปริมาณ (LOQ) เท่ากับ 21.85 และ 72.82 นาโนกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ ความเที่ยงตรงภายในวันและระหว่างวันแสดงด้วยร้อยละของค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ (% relative standard deviation) เท่ากับร้อยละ 0.37-0.65 และ 0.17-1.25 ตามลำดับ และค่าความถูกต้องแสดงด้วยร้อยละการคืนกลับเท่ากับร้อยละ 98.71±4.83 บทสรุป : วิธีวิเคราะห์นี้ยืนยันได้ว่ามีความจำเพาะ ความไว ความเที่ยงตรง และความถูกต้อง สำหรับการวิเคราะห์หาปริมาณของพลัมบาจิน วิธีวิเคราะห์ที่ผ่านการประเมินนี้ถูกใช้วิเคราะห์หาปริมาณพลัมบาจินในสารสกัดหยาบเมธานอลและเอธานอลของเจตมูลเพลิงแดงและพบปริมาณพลัมบาจินร้อยละ 0.15±0.00 และ 0.21±0.01 ของน้ำหนักแห้ง ตามลำดับ
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Al-Rimawi F. Development and validation of a simple reversed-phase HPLC-UV method for determination of oleuropein in olive leaves. J Food Drug Anal 2014; 22: 285-289.
Ariyanathan S, Saraswathy A, Rajamanickam GV. Quality control standards for the roots of three Plumbago species. Indian J Pharm Sci 2010; 72: 86-91.
Bird IM. High performance liquid chromatography: principles and clinical applications. Br Med J 1989; 299: 783-787.
Checker R, Gambhir L, Sharma D, et al. Plumbagin induces apoptosis in lymphoma cells via oxidative stress mediated glutathionylation and inhibition of mitogen-activated protein kinase phosphatases (MKP1/2). Cancer Lett 2015; 357: 267-278.
Dutt UC. The materia medica of the Hundus: compiled from Sanskrit medical works. Calcatta: Thacker, Spink & Co; 1877.
Hafeez BB, Zhong W, Fischer JW, et al. Plumbagin, a medicinal plant (Plumbago zeylanica)-derived 1,4-naphthoquinone, inhibits growth and metastasis of human prostate cancer PC-3M-luciferase cells in an orthotopic xenograft mouse model. Mol Oncol 2013; 7: 428-439.
Hajimehdipoor H, Shekarchi M, Khanavi M, Adib N, Amri M. A validated high performance liquid chromatography method for the analysis of thymol and carvacrol in Thymus vulgaris L. volatile oil. Pharmacogn Mag 2010; 6(23): 154-158.
Israni SA, Kapadia NS, Lahiri SK, Yadav GK, Shah MB. An UV-visible spectrophotometric method for the estimation of plumbagin. Int J Chem Tech Res 2010; 2(2): 856-859.
Jain AP, Hamrapurkar PD, Labana SM, Madrewar DM, Sonandkar AA. Quantitative analysis of plumbagin in root extract of P. zeylanica Linn using HPLC. Int J Pharm Sci Rev Res 2014; 24(1): 168-171.
Kaewbumrung S, Panichayupakarananta P. Antibacterial activity of plumbagin derivative-rich Plumbago indica root extracts and chemical stability. Nat Prod Res 2014; 28(11): 835-837.
Lai L, Liu J, Zhai D, et al. Plumbagin inhibits tumour angiogenesis and tumour growth through the Ras signalling pathway following activation of the VEGF receptor-2. Br J Pharmacol 2011; 165: 1084-1096.
Lorsuwannarat N, Piedrafita D, Chantree P, et al. The in vitro anthelmintic effects of plumbagin on newly excysted and 4-weeks-old juvenile parasites of Fasciola gigantica. Exp Parasitol 2014; 136: 5-13.
Lorsuwannarat N, Saowakon N, Ramasoota P, et al. The anthelmintic effect of plumbagin on Schistosoma mansoni. Exp Parasitol 2013; 133: 18-27.
Maji AK, Maity N, Banerji P, Banerjee D. A validated RP-HPLC-UV method for quantitative determination of puerarin in Pueraria tuberosa DC tuber extract. Pharm Methods 2012; 3(2): 79-83.
McKallip RJ, Lombard C, Sun J, et al. Plumbagin-induced apoptosis in lymphocytes is mediated through increased reactive oxygen species production, upregulation of Fas, and activation of the caspase cascade. Toxicol Appl Pharmacol 2010; 247: 41-52.
Padumadasa C, Abeysekera AM, Meedin SDK. A preliminary investigation of the Shodhana (detoxification) of roots of Plumbago indica L. in Ayurveda.
Rashmin P, Mrunali P, Nitin D, Nidhi D, Bharat P. HPTLC method development and validation: strategy to minimize methodological failures. J Food Drug Anal 2012; 20(4): 794-804.
Sheeja E, Joshi SB, Jain DC. Antiovulatory and estrogenic activity of Plumbago rosea leaves in female albino rats. Indian J Pharmacol 2009; 41(6): 273–277.
Sumsakul W, Plengsuriyakarn T, Chaijaroenkul W, et al. Antimalarial activity of plumbagin in vitro and in animal models. BMC Complement Altern Med 2014; 14: 15-20.
Sunil C, Duraipandiyan V, Agastian P, et al. Antidiabetic effect of plumbagin isolated from Plumbago zeylanica L. root and its effect on GLUT4 translocation in streptozotocin-induced diabetic rats. Food Chem Toxicol 2012; 50: 4356-4363.
Szepesi G. HPLC in pharmaceutical analysis. Boca Raton : CRC Press, Inc; 2000.
Unnikrishnan KP, Raja SS, Balachandran I. A reverse phase HPLC-UV and HPTLC methods for determination of plumbagin in Plumbago indica and Plumbago zeylanica. Indian J Pharm Sci 2008; 70: 844-847.
Wang CC, Chiang YM, Sung SC, et al. Plumbagin induces cell cycle arrest and apoptosis through reactive oxygen species/c-Jun N-terminal kinase pathways in human melanoma A375.S2 cells. Cancer Lett 2008; 259: 82-98.
Wang H. Rapid quantitative analysis of individual anthocyanin content based on high-performance liquid chromatography with diode array detection with the pH differential method. J Sep Sci 2014; 37, 2535-2544.
Wang T, Wu F, Jin Z, et al. Plumbagin inhibits LPS-induced inflammation through the inactivation of the nuclear factor-kappa B and mitogen activated protein kinase signaling pathways in RAW 264.7 cells. Food Chem Toxicol 2014; 64: 177-183.
Wang YC, Huang TL. High-performance liquid chromatography for quantification of plumbagin, an anti-Helicobacter pylori compound of Plumbago zeylanica L. J Chromatogr A 2005; 1094: 99-104.
Weon JB, Ma JY, Yang HJ, Lee B, Yun BR, Ma CJ. Qualitative and quantitative analysis of nine major compounds in the Bozhougyiqi-Tang using a high-performance liquid chromatography coupled with a diode array detector and electrospray ionization mass spectrometer. Pharmacogn Mag 2013; 9: 271-282.
Xu KH, Lu DP. Plumbagin induces ROS-mediated apoptosis in human promyelocytic leukemia cells in vivo. Leuk Res 2010; 34: 658-665.
Yogananth N, Basu MJ. TLC Method for the determination of plumbagin in hairy root culture of Plumbago rosea L. Global J Biotech Biochem 2009; 4(1): 66-69.
Zhang J, Onakpoya IJ, Posadzki P, et al. The safety of herbal medicine: From Prejudice to Evidence. Evid Based Complement Altern Med 2014; 2015: 1-3.
Zhang SM, Coultas KA. Identification of plumbagin and sanguinarine as effective chemotherapeutic agents for treatment of schistosomiasis. Int J Parasitol 2013; 3: 28-34.
