การวิเคราะห์ปริมาณสารสำคัญและฤทธ์ิต้านออกซิเดชันในส้มโอ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อวิเคราะห์หาปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านออกซิเดชันจากส้มโอ 3 สายพันธุ์ ได้แก่ ทับทิมสยาม ทองดีและขาวน้ำผึ้ง วิธีดำเนินการวิจัย: เตรียมสารสกัดโดยนำส่วนประกอบต่าง ๆ ของส้มโอหมักด้วยเอทานอลเป็นเวลา 7 วัน จากนั้นนำสารสกัดหยาบส่วนต่าง ๆ ของส้มโอทั้ง3 สายพันธุ์มาศึกษาปริมาณสารสำคัญในกลุ่มแคโรทีนอยด์ ฟลาโวนอยด์ ฟีนอลิก แอนโทรไซยานินและศึกษาฤทธิ์ต้านออกซิเดชันด้วยวิธี DPPH, ABTS และ FRAP ผลการวิจัย: พบปริมาณสารสำคัญกลุ่มแคโรทีนอยด์ ฟลาโวนอยด์ ฟีนอลิก แอนโทรไซยานินและฤทธิ์ต้านออกซิเดชันจากสารสกัดส่วนต่าง ๆ ของส้มโอทั้ง 3 สายพันธุ์ โดยสารสกัดส้มโอพันธุ์ทับทิมสยามมีปริมาณสารสำคัญมากที่สุด รองลงมาคือส้มโอพันธุ์ทองดีและขาวน้ำผึ้ง ตามลำดับ เมื่อเปรียบเทียบปริมาณสารสำคัญในส่วนต่าง ๆ ของส้มโอพบปริมาณแคโรทีนอยด์และปริมาณฟลาโวนอยด์ในส่วนเปลือกนอกของส้มโอทั้ง 3 ชนิดจะมีปริมาณมากที่สุด ปริมาณฟีนอลิกในส่วนเนื้อเยื่อจากส้มโอทั้ง 3 ชนิดมีปริมาณมากที่สุด ส่วนปริมาณแอนโทรไซยานินพบมากที่สุดในส่วนน้ำคั้น จากการทดสอบฤทธิ์ต้านออกซิเดชันทั้ง 3 วิธีสารสกัดจากส้มโอพันธุ์ทับทิมสยามมีฤทธิ์ต้านออกซิเดชันดีที่สุด รองลงมาคือพันธุ์ทองดีและขาวน้ำผึ้ง เมื่อเปรียบเทียบฤทธิ์ต้านออกซิเดชันในส่วนต่าง ๆ ของส้มโอ ส่วนเนื้อเยื่อของส้มโอทัง้ 3 ชนิดมีฤทธิ์ดีที่สุด โดยเรียงจากพันธุ์ทับทิมสยาม ทองดีและขาวน้ำผึ้ง ตามลำดับ ในขณะที่ส่วนเมล็ดของส้มโอทั้ง 3 ชนิดมีฤทธิ์น้อยที่สุด โดยเรียงจากพันธุ์ทับทิมสยาม ทองดีและขาวน้ำผึ้ง ตามลำดับ สรุปผลการวิจัย: จากการศึกษาในครั้งนี้สรุปได้ว่าส้มโอประกอบด้วยสารสำคัญในกลุ่มแคโรทีนอยด์ ฟีนอลิก ฟลาโวนอยด์ และแอนโทรไซยานินมีความสามารถในการต้านออกซิเดชันที่ดี โดยฤทธิ์ทางชีวภาพที่ดีที่สุดพบในพันธุ์ทับทิมสยาม ดังนั้นส้มโอจึงเป็นผลไม้ที่มีศักยภาพในการนำมาศึกษาและวิจัยต่อยอดด้านเภสัชวิทยา และยังเป็นการเพิ่มมูลค่าทางเศรษฐกิจแก่ผลไม้ไทยอีกด้วย
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Arnao MB, Cano A, Acosta M. The hydrophilic and lipophilic contribution to total antioxidant activity. FoodChem 2001; 73: 239–244.
Benzie IFF, Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of ‘‘antioxidant power’’: the FRAP assay. Anal Biochem 1996;239: 70–76.
Brand WW, Cuvelier M, Berset C. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. lebensmittel wissenschaft undtech 1995; 28: 25–30.
Chaiwong S, Theppakorn T. Bioactive compounds and antioxidant capacity of pink pummelo (Citrus grandis (L.) Osbeck) CV“Thongdee” in Thailand. J of ISSAAS 2010; 16(2): 10-16.
Chaiwong S, Theppakorn T. Investigation of limonoids, flavanones, total polyphenol content and antioxidant activity in Seven Thai pummelo cultivars. Kasetsart J Nat Sci 2010; 43: 458–46.
Davies BH. Carotenoids. Chemistry and biochemistry of plant pigments. London: Academic Press 1976; 38-165.
Dudonne S, Vitrac X, Coutiere P, et al. Comparative study of antioxidant properties and total phenolic content of 30 plant extracts of industrial interest using DPPH, ABTS, FRAP, SOD, and ORAC Assays. J of Agri and Food
Chem 2009; 57(5): 1768–1774.
Folin, Ciocalteu. On tyrosine and tryptophan deterations in proteins. J of Biol Chem 1927; 73: 627–650.
Judprasong K, Charoenkiatkul S, Thiyajai P, et al. Nutrients and bioactive compounds of Thai indigenous fruits. Food Chem 2013; 140(3): 507-12.
Lee J, Durst RW, Wrolstad RE. Deterนาทีation of total monomeric anthocyanin pigment content of fruit juices, beverages, natural colorants, and wines by the pH differential method: Collaborative study. J of the AOAC Inter 2005; 88: 1269–1278.
Masisi M, Beta T, Moghadasian M. Antioxidant properties of diverse cereal grains: A review on in vitro and in vivo studies. Food Chem 2015; 196: 90-97.
Oyedepo T. Antioxidant potential of Citrus maxima fruit juice in rats. Glob Adv Res J of Med and Medic Sci 2012; 1(5): 122-126.
Pichaiyongvongdee S, Haruenkit R. Investigation of limonoids, flavanones, total polyphenol content and antioxidant activity in seven thai pummel cultivars. Kasetsart J Nat Sci 2009; 43: 458-466.
Rakesh K, Saurabh V, Nawaz V, et al. Comparative nutritional analysis and Antioxidant activity of fruit juices of some citrus spp. Octa J of biosci 2013; 1(1): 44-53.
Thaipong K, Boonprakob U, Crosby K, et al. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts. J of Food Comp and Anal 2006; 19(6-7): 669–675.
Tsai H, Chang S, Chang S. Antioxidant content and free radical scavenging ability of fresh red pummelo [Citrus grandis (L.) Osbeck] juice and freeze-dried products. J of Agri and Food Chem 2007; 55(8): 2867-2872.
United States Department of Agriculture. National Nutrient Database for Standard (Pummelo) [Online]. 2011 Dec 19 [cited 2014 Aug 25]. Available from: http://ndb.nal.usda.gov.
Woisky RG, Salatino A. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality Control. J of Agri Res 1998; 37(2): 99-105.
