การพัฒนาระบบนำส่งอนุภาคนีโอโซมของสารสกัดกระชายดำ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: กระชายดำมีฤทธิ์ทางเภสัชวิทยา เช่น ฤทธิ์ในการต้านการอักเสบ ต้านอนุมูลอิสระ และฤทธิ์ฆ่าเชื้อแบคทีเรีย กระชายดำมีสารสำคัญกลุ่มเมทอกซิฟลาโวนที่พบได้ในปริมาณสูงและออกฤทธิ์ทางเภสัชวิทยา แต่สารกลุ่มดังกล่าวมีคุณสมบัติไม่ชอบน้ำและดูดซึมผ่านทางผิวหนังได้น้อย ผู้วิจัยจึงมีความสนใจที่จะพัฒนาระบบนำส่งนีโอโซมของสารสำคัญเมทอกซิฟลาโวนของสารสกัดกระชายดำ วิธีการดำเนินการวิจัย: เตรียมนีโอโซมด้วยวิธีทินฟิล์มไฮเดรชันโดยศึกษาชนิดของสารลดแรงตึงผิว 3 ชนิด คือ Span®60, Span®80 และ Tween®80 อัตราส่วนโดยมวลระหว่างสารลดแรงตึงผิวต่อคอเลสเตอรอลต่อกระชายดำเท่ากับ 1:1:0.1 นอกจากนี้ยังศึกษาผลของการเติมสารเพิ่มความคงตัว(ไดเฮกซะเดกคิลฟอสเฟต) ต่อคุณลักษณะของนีโอโซม ผลการศึกษาวิจัย: พบว่านีโอโซมของกระชายดำที่ได้มีขนาดอนุภาคอยู่ในช่วง 0.164-2.919 μm นีโอโซมที่มีขนาดอนุภาคเฉลี่ยเล็กที่สุดคือตำรับที่ใช้ Span®80 (0.164 μm, ค่า PDI เท่ากับ 0.503) นีโอโซมของกระชายดำมีร้อยละการกักเก็บสารสำคัญอยู่ในช่วง 70-99 ซึ่งนีโอโซมที่ใช้ Span®60 มีร้อยละการกักเก็บสารสกัดกระชายดำสูงสุด (97.7-98.4) หลังทำการทดสอบความคงตัวพบว่านีโอโซมในตำรับที่ใช้ Span®60 และ Tween®80 มีประสิทธิภาพในการกักเก็บสารสำคัญลดลง แต่ทัง้ นี้ประสิทธิภาพในการกักเก็บสารสำคัญยังอยู่ในช่วงร้อยละ 85-91 ขณะที่ตำรับที่ใช้ Span®80 มีประสิทธิภาพในการกักเก็บสารสำคัญเพิ่มขึ้น (ร้อยละ 95.4-97.2) ผลของการเติมไดเฮกซะเดกคิลฟอสเฟตพบว่าทำให้นีโอโซมที่ใช้ Span®60 และ Span®80 มีขนาดเพิ่มขึ้นและร้อยละการกักเก็บสารสำคัญลดลง แต่ตำรับที่ใช้ Tween®80 พบว่ามีร้อยละการกักเก็บสารสำคัญเพิ่มขึ้นและขนาดอนุภาคเล็กลงหลังผ่านทดสอบความคงตัว นอกจากนี้ยังพบว่านีโอโซมที่ใช้ Tween®80 เกิดฟองมากในขั้นตอนการนำไประเหยตัวทำละลายอินทรีย์ สรุปผลการวิจัย: สารลดแรงตึงผิวที่ทำให้ได้ระบบนำส่งอนุภาคนีโอโซมของสารสกัดกระชายดำที่ดีที่สุดในการศึกษาวิจัยครั้งนี้คือ Span®60 เนื่องจากเตรียมง่าย ร้อยละการกักเก็บสารสำคัญสูง และมีความคงตัวสูง
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Abdelbary G, El-gendy N. Niosome-encapsulated gentamicin for ophthalmic controlled delivery. Pharm SciTech 2008; 9: 740-747.
Akase T, Shimada T, Terabayashi S, et al. Antiobesity effects of Kaempferia parviflora in spontaneously obese type II diabetic mice. J Nat Med 2011; 65: 73–80.
Chaturapanich G, Chaiyakul S, Verawatnapakul V, et al. Effects of Kaempferia parviflora extracts on reproductive parameters and spermatic blood flow in male rats. Reproduction 2008; 136: 515–522.
Daodee S. Products of Kaempferia parviflora. In:Sripanidkulchai B, editors. Kaempferiaparviflora: Research and development. Khon Kaen: Klungnanavittaya printing; 2010. 333.[in Thai]
Griffin W.C. Classification of surface active agents by HLB. J Soc Cosmet Chem 1949; 1: 311-326.
Hanu P, Harmanpreet S. Formulation and evaluation of niosome containing punicalagin form peels of Punicagranatum. J Drug Deliv Therapeutics 2012; 2(6): 56-67.
Jiranaikulwanitch J, Teeraniti N. Preparation of mango leaf extract niosomes. A special project submitted in partial fulfilent of the requirement for the Bachelor degree of science in pharmacy 2005. [in Thai]
Kato K, Walde P, Koine N, et al. Temperaturesensitive nonionic vesicles prepared from Span® 80 (Sorbitan Monooleate). Langmuir 2008; 24: 10762-10770.
Kummee S, Tewtrakul S, Subhadhirasakul S. Antimicrobial activity of the ethanol extract and compounds from the rhizomes of Kaempferia parviflora. Songklanakarin J Sci Technol 2008; 30(4): 463-466.
Malakul W, Ingkaninan K, Sawasdee P, et al. The ethanolic extract of Kaempferia parviflora reduces ischaemic injury in rat isolated hearts. J Ethnopharmacol 2011; 137: 184-191.
Mekjaruskul C, Yang YT, Leed MGD, et al. Novel formulation strategies for enhancing oral delivery of methoxyflavones in Kaempferia parviflora by SMEDDS or complexation with 2-hydroxypropyl-β-cyclodextrin. Int J Pharm. 2013; 445:1–11.
Ramrit T, Yingngam B, Rungseevijitprapa W. Development of Tripala niosomes. IJPS 2014; 9: 22-26. [in Thai]
Rujjanawate C, Kanjanapothi D, Amornlerdpison D, et al. Anti-gastric ulcer effect of Kaempferia parviflora. J Ethnopharmacol 2005; 102: 120–122.
Sae-wong C, Tansakul P, Tewtrakul S. Antiinflammatory mechanism of Kaempferia parviflora in murine macrophage cells (RAW264.7) and in experimental animals. J Ethnopharmacol 2009; 124: 576–80.
Sripanidkulchai B. Botanical characteristics of Kaempferia parviflora. In: Sripanidkulchai B, editors. Kaempferiaparviflora: Research and development. Khon Kaen: Klungnanavittaya printing; 2010. 47-48. [in Thai]
Sutthanut K, Sripanidkulchai B, Yenjai C, et al. Simultaneous identification and quantitation of 11 flavonoid constituents in Kaempferia parviflora by gas chromatography. J Chromatogr A 2007; 1143 (1-2): 227–233.
Tewtrakul S, Subhadhirasakul S, Kummee S. Antiallergic activity of compounds from Kaempferia parviflora. J Ethnopharmacol 2008; 116: 191–193.
Thanaketpaisarn O. Niosome delivery systems in pharmaceutical applications. IJPS 2012; 8(2): 12-26. [in Thai]
Waddad AY, Abbad S, Yu F, et al. Formulation characterization and pharmacokinetics of Morin hydrate niosomes prepared from various non-ionic surfactants. Int J Pharm. 2013; 456: 446-456.
Yenjai C, Prasanphen K, Daodee S, et al.
Bioactive flavonoids from Kaempferiaparviflora. Fitoterpia 2004; 75(1): 89-92.
Yoshioka T, Sternberg B, Florence AT. Preparation and properties of vesicles (Niosomes) of sorbitan monoesters (Span-20, Span-40, Span-60 and Span-80) and a Sorbitan Triester (Span-85). Int J Pharm 1994; 105:1-6.
