ผลของสารสกัดแคลลัสหม่อนและมัลเบอร์โรไซด์เอต่อระดับกลูตาไธโอนในตับหนูถีบจักรที่ถูกเหนี่ยวนำภาวะเครียดออกซิเดชั่นด้วยพาราเซตามอล
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: หม่อน (Morus alba Linn.) ในการแพทย์แผนไทยเป็นยาขับเหงื่อ ปกป้องตับและไต มัลเบอร์โรไซด์เอ เป็นสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพหลักในหม่อน มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและปกป้องตับ การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินผลของสารสกัดแคลลัสหม่อนด้วยเมธานอล (MA) และมัลเบอร์โรไซด์เอ (MBS) ต่อลักษณะทางจุลพยาธิวิทยาของตับและระดับกลูตาไธโอนในตับของหนูถีบจักรที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดภาวะเครียดออกซิเดชั่นด้วยพาราเซตามอล วิธีดำเนินการวิจัย: หนูถีบจักร สายพันธุ์ ICR เพศผู้ อายุ 7 สัปดาห์ ได้รับพาราเซตามอล 400 มก./กก./วัน โดยการป้อนทางปาก ร่วมกับเอ็นอะซิทิลซิสเตอีน (NAC) 300 มก./กก./วัน หรือ MBS 50 มก./กก./วัน หรือ MA 250, 500, และ 1,000 มก./กก./วัน โดยการฉีดเข้าช่องท้อง ติดต่อกัน 7 วัน ขณะที่กลุ่มควบคุมได้รับคาร์บอกซีเมธิลเซลลูโลส ร้อยละ 0.5 ทำการศึกษาลักษณะทางจุลพยาธิวิทยาของเนื้อเยื่อตับโดยการย้อมสีฮีมาทอกไซลินและอีโอซิน ร่วมกับการวิเคราะห์ปริมาณกลูตาไธโอนรูปแบบรีดิวซ์ (GSH) และออกซิไดซ์ (GSSG) และสมรรถนะเอนไซม์กลูตา ไธโอนเปอร์ออกซิเดส (GPx) ผลการวิจัย: เนื้อเยื่อตับเกิดการบาดเจ็บหลังจากได้รับพาราเซตามอลโดยพิจารณาจากลักษณะสำคัญทางจุลพยาธิวิทยา คือ นิวเคลียสเหี่ยว (pyknosis) ร่วมกับการมีปริมาณ GSH, GSSG และสมรรถนะของเอนไซม์ GPx ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ แต่เป็นที่น่าสนใจว่าการบาดเจ็บของเนื้อเยื่อตับในหนูที่ได้รับ NAC, MBS และ MA ลดลงเมื่อเปรียบเทียบกับหนูที่ได้รับเพียงพาราเซตามอลเท่านั้น สอดคล้องกับปริมาณ GSH และ GSSG รวมถึงสมรรถนะของเอนไซม์ GPx ที่เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญหลังจากได้รับ MBS และ MA สรุปผลการวิจัย: พาราเซตามอลส่งผลลดระดับกลูตาไธโอนและสมรรถนะของเอนไซม์ GPx ในตับทำให้เกิดภาวะเครียดออกซิเดชั่นและการบาดเจ็บของเซลล์ตับของหนูถีบจักร MBS และ MA มีประสิทธิผลในการปกป้องตับโดยการเพิ่มปริมาณกลูตาไธโอนและสมรรถนะของเอนไซม์ GPx ดังนั้น MBS และ MA จึงมีศักยภาพในการนำไปพัฒนาต่อยอดเป็นยาทางเลือกหรือผลิตภัณฑ์เสริมสุขภาพช่วยปกป้องตับได้
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Aftab N, Likhitwitayawuid K, Vieira A. Comparative antioxidant activities and synergism of resveratrol and oxyresveratrol. Nat Prod Res 2010; 24: 1726-33.
Caciatore I, Cornacchia C, Pinnen F, Mllica A, Stefano AD. Prodrug approach for increasing cellular glutathione levels. Molecules 2010; 15: 1242-64.
Chatuphonprasert W, Udomsuk L, Monthak O, Churikhit Y, Putalun W, Jarukamjorn K. Effect of Pueraria mirifica and miroestrol on the antioxidation-related enzyme in ovariectomized mice. J Pharm Pharmacol 2012; 65: 447-56.
D’Agata LD, Balistreri WF. Evaluation of liver disease in the pediatric patient. Pediatr Rev 1999; 20(11): 376-89.
Erfan N, Mirjam V, Dirk W, et al. Increased efflux of oxidized glutathione (GSSG) causes glutathione depletion and potentially diminishes antioxidant defense in sickle erythrocytes. Biochim Biophys Acta 2011; 1812(11): 1412-17.
Francesco M, Hariom Y, Upendra G, Amr H, Shalini J, Emilio M. Protective effect of a phytocompound on oxidative stress and DNA fragmentation against paracetamol induced-liver damage. Ann Hepatol 2009; 8(1): 50-6.
Galindo I, Hernaez B, Berna J, et al. Comparative inhibitory activity of the stilbene resveratrol and oxyresveratrol on African swine fever virus replication. Antiviral Res 2011; 9: 57-63.
Hamza RZ, Al-Harbi MS. Amelioration of paracetamol hepatotoxicity and oxidative stress on mice liver with silymarin and Nigella sativa extract supplement. Asian Pac J Trop Biomed 2015; 5(7): 521-31.
Hinson JA, Reid AB, Mccullough SS, James LP. Acetaminophen-induced hepatotoxicity: role of metabolic activation reactive oxygen/nitrogen species and mitochondrial permeability transition. Drug Metab Rev 2004; 36: 805-22.
Hodgman JM, Garrard RA. A review of acetaminophen poisoning. Crit Care Nurs Clin North Am 2012; 28: 499-516.
James LP, Mayeux PR, Hinson JA. Acetaminophen-induced hepatotoxicity. Drug Metab Dispos 2003; 31(12): 1499-506.
Jearapong N, Chatuphonprasert W, Jarukamjorn K. Effect of tetrahydrocurcumin on the profiles of drug-metabolizing enzymes induced by a high fat and high fructose diet in mice. Chem Biol Interact 2015; 239: 67-75.
Jin Zhou, Shun-xiang Li, Wei Wang, et al. Variation in the levels of mulberroside A, oxyresveratrol and resveratrol in mulberries in different seasons and during growth. Sci World J 2013; 2013: 1-7.
Kals J, Starkopf J, Zilmer M, et al. Antioxidant UPF1 attenuates myocardial stunning in isolated rat hearts. Int J Cardiol 2008; 125: 133-5.
Kidd PM. Glutathione: systemic protectant against oxidative and free radical damage. Altern Med Rev 1997; 1: 155-76.
Komaikul J, Kitisripanya T, Tanaka H, Sritularak B, Putalun W. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay for specific detection of mulberroside A in mulberry (Morus alba L.) using anti-mulberroside A polyclonal antibody. Food Anal Method 2014; 7(1): 58-63.
Kondo S, Chatuphonprasert W, Jaruchotikamol A, Sakuma T, Nemoto N. Cellular glutathione content modulates the effect of andrographolide on β-naphthoflavone-induced CYP1A1 mRNA expression in mouse hepatocytes. Toxicology 2011; 280(1-2): 18-23.
Lipipun V, Sasivimolphan P, Yoshida Y, et al. Topical cream- based oxyresveratrol in the treatment of cutaneous HSV-1 infection in mice. Antiviral Res 2011; 91: 154-60.
Meyers LL, Beierschmitt WP, Khairallah EA, Cohen SD. Acetaminophen-induced inhibition of mitochondrial respiration in mice. Toxicol Appl Pharmacol 1998; 93: 378-87.
Polson J, Lee WM. The management of acute liver failure. Hepatology 2005; 41(5): 1179-97.
Qiu F, Komatsu K, Kawasaki K, Satio K, Yao XS, Kano Y. A novel stilbene glucoside, oxyresveratrol 3’-O-beta-glucopyranoside from the root bark of Morus alba. Planta Med 1996; 62(6): 559-61.
Rice-Evans CA, Miller NJ, Paganga G. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends Plant Sci 1997; 2(4): 152-9.
Saensouk P, Suddee N. Effect of NAA and BA on callus and shoot formation of Asparagus racemosus Wild. KKU Res J 2004; 9(2): 31-9.
Shah VN, Deval K. Hepatoprotective activity of leaves of Parkinsonia aculeate Linn. against paracetamol induced hepatotoxicity in rats. Int J Pharm 2011; 1(2): 59-66.
Shapoval GS, Gromovaia VF. Mechanism of antioxidant protection of an organism from oxidative stress. Ukr Biochem J 2003; 75(2): 5-13.
Shi L, Zhang Z, Jin J. Protective function of cis-mulberroside A and oxyresveratrol from Ramulus mori against ethanol-induced hepatic damage. Environ Toxicol Phar 2008; 26: 325-30.
Somparn N, Jitvaropas R, Saenthaweesuk S, Thuppia A. Hepatoprotective and antioxidant effects of Polygonum odoratum L. extract against acetaminophen-induced hepatotoxicity in rats. Thammasat Med J 2013; 13(4): 456-64.
Tengamnuay P, Pengrungruangwong K, Pheansri I, Likhitwitayawuid K. Artocarpus lakoocha heartwood extract as a novel cosmetic ingredient: evaluation of the in vitro anti-tyrosinase and in vivo skin whitening activities. Int J Cosmet Sci 2006; 28: 269-76.
Tiwari B, Khosa R. Hepatoprotective and antioxidant effect of Sphaeranthus indicus against acetaminophen–induced hepatotoxicity in rats. J Trop Med 2009; 6(2): 1-5.
Vale JA, Proudfoot AT. Paracetamol (acetaminophen) poisoning. Lancet Neurol 1995; 346(8974): 547-52.
Wuttidhammaved W. The Rattanakosin pharmacy ancient book. Bangkok: Odian store; 2007.
Yoshimatsu K. Tissue culture of medicinal plant: Micropropagation, transformation and production of useful secondary of metabolites. Stud Nat Prod Chem 2008; 34: 647-752.
