สารสกัดเฮกเซนของกระชายดำเสริมฤทธิ์ของยาปฏิชีวนะต่อการยับยั้งเชื้อ Staphylococcus aureus สายพันธุ์ดื้อยาเมธิซิลลิน

Main Article Content

บุญเลี้ยง สุพิมพ์
ปิยะพงษ์ ชุมศรี
อรทัย ปานเพชร

บทคัดย่อ

สารสกัดจากเหง้ากระชายดำมีฤทธิ์ในการยับยั้งจุลินทรีย์ได้หลายชนิด เช่น เชื้อรา เชื้อยีสต์ และเชื้อแบคทีเรีย การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารสกัดเฮกเซนของกระชายดำและยาปฏิชีวนะในการยับยั้งการเจริญของเชื้อ methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) วัสดุและวิธีการทดลอง: ศึกษาฤทธิ์ยับยั้งเชื้อ MRSA ของสารสกัดเฮกเซนและยาปฏิชีวนะด้วยวิธี agar dilution และ ศึกษาฤทธิ์ยับยั้งเชื้อ MRSA เมื่อใช้สารสกัดเฮกเซนร่วมกับยาปฎิชีวนะด้วยวิธี checkerboard dilution โดยทำการทดลองในเชื้อ MRSA จำนวน 20 ไอโซเลท และวิเคราะห์ข้อมูลโดยวิธีหาความถี่ และคำนวณค่า minimum inhibitory concentration (MIC) และ ค่า Fractional inhibitory concentration index (FICI)  ผลการศึกษาวิจัย: สารสกัดเฮกเซนสามารถยับยั้งการเจริญของเชื้อ MRSA 10 ไอโซเลท ซึ่งมีค่า MIC อยู่ระหว่าง 1000 – 2000 µg/ml ในขณะที่ยาเพนิซิลลินมีค่า MIC อยู่ระหว่าง 0.125 – >256 µg/ml การศึกษาสรุปได้ว่าเชื้อทุกไอโซเลทดื้อต่อยาเพนิซิลลิน ส่วนยาแวนโคมัยซิน มีค่า MIC อยู่ระหว่าง 0.25 – 2 µg/ml สรุปได้ว่าเชื้อส่วนใหญ่ไวต่อยาแวนโคมัยซิน ยกเว้นเพียง 1 ไอโซเลท (MRSA 5 - 333) ที่ดื้อมีค่า MIC เท่ากับ 4 µg/ml การศึกษาฤทธิ์ร่วมกันของสารสกัดเฮกเซนกับยาแวนโคมัยซินต่อการยับยั้งการเจริญของเชื้อ MRSA พบว่า ให้ผลยับยั้ง MRSA แบบเสริมฤทธิ์กัน จำนวน 4 ไอโซเลท (ค่า FICI = 0.5) และไม่มีผลต่อฤทธิ์ของยาแวนโคมัยซิน    ในเชื้อ 6 ไอโซเลท (ค่า FICI = 1) ส่วนการศึกษาฤทธิ์ร่วมกันของสารสกัดเฮกเซนกับยาเพนิซิลลิน พบว่า ให้ผลยับยั้ง MRSA แบบเสริมฤทธิ์กันทุกไอโซเลท (ค่า FICI ≤ 0.5) สรุปผลการวิจัย: สารสกัดเฮกเซนของกระชายดำสามารถยับยั้งการเจริญของเชื้อ MRSA และเสริมฤทธิ์ของยาปฏิชีวนะในการยับยั้งเชื้อ MRSA ได้ ดังนั้นผลการศึกษานี้สามารถนำไปสู่การพัฒนากลยุทธ์ในการนำสารจากธรรมชาติมาใช้ร่วมกันกับยาปฏิชีวนะสมัยใหม่เพื่อเพิ่มฤทธิ์ในการรักษาโรคติดเชื้อ MRSA ต่อไป

Article Details

ประเภทบทความ
เภสัชศาสตร์ (Pharmaceutical Sciences)
ประวัติผู้แต่ง

บุญเลี้ยง สุพิมพ์, มหาวิทยาลัยราชภัฏเลย

สาขาวิชาสาธารณสุขศาสตร์ ภาควิชาวิทยาศาสตร์ประยุกต์ คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี

ปิยะพงษ์ ชุมศรี, มหาวิทยาลัยราชภัฏเลย

สาขาวิชาสาธารณสุขศาสตร์ ภาควิชาวิทยาศาสตร์ประยุกต์ คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี

อรทัย ปานเพชร, มหาวิทยาลัยราชภัฏเลย

สาขาวิชาสาธารณสุขศาสตร์ ภาควิชาวิทยาศาสตร์ประยุกต์ คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี

เอกสารอ้างอิง

Aswapokee N. New Therapeutic Options for Resistant Gram-Positive Infections Siriraj Scientific Congress. Siriraj Hospital: 2008.

Barber M, Rozwadowska-Dowzenko M. Infection by penicillin-resistant staphylococci. Lancet 1948; 2(6530): 641-644.

Chattiranan S, Sabaijai W, Niyomthai S. Phytochemical Screening and Antioxidant Activity of Clerodendrum disparifolium Leaves. KKU Sci J 2013; 41(3): 723 - 730.

Climo MW, Patron RL, Archer GL. Combinations of vancomycin and beta-lactams are synergistic against staphylococci with reduced susceptibilities to vancomycin. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43(7): 1747-1753.

Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests: Approved standard M2-A10. 10th ed. Wayne, PA.: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2009.

Dowrote N. The effects of Kaempferia parviflora and Hibiscus sabdariffa extracts on arterial blood pressure and renal functions in rats. [Master of Science in Physiology.]. Songkla: Prince of Songkla University; 2010.

EUCAST. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control as recommended by EUCAST, Version 5.0. https://www.eucast.org. ; 2015.

Eumkeb G, Siriwong S, Phitaktim S, Rojtinnakorn N, Sakdarat S. Synergistic activity and mode of action of flavonoids isolated from smaller galangal and amoxicillin combinations against amoxicillin-resistant Escherichia coli. J Appl Microbiol 2012; 112(1): 55-64.

Hausler WJ, Herrmann KL, Isenberg HD. Manual of clinical microbiology. 10th ed. Washington, DC: American Society for Microbiology; 1991.

Indranupakorn R. Identification, extraction and separation of active constituents of herb. Bangkok: chulalongkorn University; 2004.

Kummee S, Tewtrakul S, Subhadhirasakul S. Antimicrobial activity of the ethanol extract and compounds from the rhizomes of Kaempferia parviflora. Songklanakarin J Sci Technol 2008; 30 (4): 463 - 466.

Kusirisin W, Srichairatanakool S, Lerttrakarnnon P, et al. Antioxidative activity, polyphenolic content and anti-glycation effect of some Thai medicinal plants traditionally used in diabetic patients. Med Chem 2009; 5(2): 139-147.

Lorian V. Antibiotice in laboratory medicine. 5th ed. Philadephia: Lippincott Williams & Wilkins; 2005.

Medical Technology Laboratory. Direct colony suspension method (DCS). Thammasat University Hospital; 2008.

Mun SH, Joung DK, Kim YS, et al. Synergistic antibacterial effect of curcumin against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Phytomedicine 2013; 20(8-9): 714-718.

Panthong A, Tassaneeyakul W, Kanjanapothi D, Tantiwachwuttikul P, Reutrakul V. Anti-inflammatory activity of 5,7-dimethoxyflavone. Planta Med 1989; 55(2): 133-136.

Plata K, Rosato AE, Wegrzyn G. Staphylococcus aureus as an infectious agent: overview of biochemistry and molecular genetics of its pathogenicity. Acta Biochim Pol 2009; 56(4): 597-612.

Rujjanawate C, Kanjanapothi D, Amornlerdpison D, Pojanagaroon S. Anti-gastric ulcer effect of Kaempferia parviflora. J Ethnopharmacol 2005; 102(1): 120-122.

Sae-wong C, Tansakul P, Tewtrakul S. Anti-inflammatory mechanism of Kaempferia parviflora in murine macrophage cells (RAW 264.7) and in experimental animals. J Ethnopharmacol 2009; 124(3): 576-580.

Sawasdee P, Sabphon C, Sitthiwongwanit D, Kokpol U. Anticholinesterase activity of 7-methoxyflavones isolated from Kaempferia parviflora. Phytother Res 2009; 23(12): 1792-1794.

Schito GC. The importance of the development of antibiotic resistance in Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Infect 2006; 12 Suppl 1(3-8.

Sirikhansaeng P, Vichitphan K, Vichitphan S. The flavonoid content and antibacterial activity of Kaempferia parviflora Wall. ex Baker in Krachai-Dum herbal wine. 13th International Biotechnology Symposium & Exhibition (IBS-2008) Dalian China Biotechnology for the Sustainnability of Human Society 2008. p. S746

Siriwong N, Chukeatirote E. Antibiotic resistance in Staphylococcus aureus and controlling. Songkla Med J 2009; 27(4): 347 - 358.

Spoorthi NJ, Vishwanatha T, Reena V, et al. Antibiotic synergy test: checkerboard method on multidrug resistant Pseudomonas aeruginosa. International research journal of pharmacy 2011; 2(12): 196 - 198.

Tewtrakul S, Subhadhirasakul S, Kummee S. Anti-allergic activity of compounds from Kaempferia parviflora. J Ethnopharmacol 2008; 116(1): 191-193.

Tewtrakul S, Subhadhirasakul S. Anti-allergic activity of some selected plants in the Zingiberaceae family. J Ethnopharmacol 2007; 109(3): 535-538.

Thathaisong U, Sangnual S. Synergistic Effect of Alpha-Mangostin and Gentamicin against Methicillin-resistant Staphylococcus aureus Isolated from King Narai Hospital. Burapha Sci J 2011; 16(2): 89 - 96.

Yenjai C, Prasanphen K, Daodee S, Wongpanich V, Kittakoop P. Bioactive flavonoids from Kaempferia parviflora. Fitoterapia 2004; 75(1): 89-92.

Yenjai C, Sutthanut K, Sripanidkulchai B, et al. Further studies of bioactive flavonoids from Kaempferia parviflora. KKU Sci J 2007; 35(1): 37 - 41.

Ziglam H, Nathwani D. New therapeutic agents for resistant Gram-positive infections. Expert Rev Anti Infect Ther 2003; 1(4): 655-665.