การพัฒนานาโนอิมัลชันบรรจุน้ำมันยางนาสำหรับผิวหนัง

Main Article Content

ธนวัฒน์ โปธา
ภาณุมาศ ภูมาศ
ดวงกมล ศักดิ์เลิศสกุล

บทคัดย่อ

บทนำ: นาโนอิมัลชันเป็นระบบการนำส่งยาหรือสารสำคัญที่ถูกนำมาใช้เพิ่มประสิทธิภาพในการแทรกผ่านผิวหนังชั้นสตราตัมคอร์เนียม และป้องกันการสลายตัวของสารสำคัญ การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนา และศึกษาลักษณะของตำรับนาโนอิมัลชันชนิดน้ำมันในน้ำ (oil in water: o/w) ของน้ำมันยางนา ด้วยวิธีใช้พลังงานสูง และประเมินความคงสภาพทางกายภาพของตำรับ วิธีการดำเนินการวิจัย: ชนิดของส่วนประกอบและสัดส่วนที่ใช้ในการตั้งตำรับถูกนำมาสร้างแผนภาพวัฏภาคไตรภาคเทียมเพื่อหาบริเวณที่ทำให้เกิดนาโนอิมัลชัน และนำตำรับที่ได้มาบรรจุน้ำมันยางนาร้อยละ 2 (w/w) จากนั้นทดสอบขนาด การกระจายตัว และค่าศักย์ไฟฟ้าซีตาของอนุภาคในตำรับนาโนอิมัลชันโดยใช้ particle size analyzer และศึกษารูปทรงของอนุภาคนาโนอิมัลชันถูกสังเกตโดยใช้กล้องจุลทรรศน์แบบส่องผ่าน (scanning electronmicroscope: SEM) รวมทั้งฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและปริมาณสารประกอบฟีนอลิกของตำรับนาโนอิมัลชันทดสอบโดยวิธี DPPH และ Folin Ciocalteau ตามลำดับ ผลการศึกษา: แผนภาพวัฏภาคไตรภาคเทียมที่ทำให้เกิดนาโนอิมัลชันประกอบไปด้วยวัฏภาคน้ำมันคือ isopropryl myristate สารลดแรงตึงผิวและสารลดแรงตึงผิวร่วม (tween60/ethanol) ในสัดส่วน 2:1 และวัฏภาคน้ำ เมื่อเติมน้ำมันยางนาลงในตำรับนาโนอิมัลชันในปริมาณร้อยละ 2 ของตำรับ พบว่าตำรับที่ได้มีลักษณะใส และมีอนุภาคเป็นทรงกลมและมีการกระจายขนาดของอนุภาคใกล้เคียงกัน อนุภาคของนาโนอิมัลชันที่ได้อยู่ในช่วง 29-162 นาโนเมตร มีค่าศักย์ไฟฟ้าซีตาของตำรับในช่วง -9 ถึง -24 mV  และตำรับนาโนอิมัลชันมีค่าพีเอชใกล้เคียงกับผิว ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ (DPPH) ของน้ำมันยางนาความเข้มข้นร้อยละ 2 เท่ากับ 0.069 mM Trolox Equivalent (mM TE) และมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดเท่ากับ 0.034 mg GAE/ml ปริมาณสารประกอบฟีนอลิกที่บรรจุอยู่ในอนุภาคร้อยละ 77.57-90.26 และเมื่อนำไปทดสอบความคงสภาพด้วยวิธีอุณหภูมิร้อน-สลับเย็น (heating-cooling cycle) พบว่าตำรับมีความคงสภาพดี มีลักษณะใส และไม่เกิดการแยกชั้น สรุปผลการศึกษา นาโนอิมัลชันที่บรรจุน้ำมันยางนามีความคงสภาพที่เหมาะสม และมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่ดี วิธีการที่นำรูปแบบการนำส่งสารสำคัญด้วยนาโนอิมัลชันและน้ำมันยางนามารวมกันที่แสดงให้เห็นในการศึกษานี้ สามารถนำมาพัฒนาเป็นตำรับนาโนอิมัลชันเพื่อใช้ในการผลิตเป็นเครื่องสำอางในระดับอุตสาหกรรมต่อไป

Article Details

ประเภทบทความ
เภสัชศาสตร์ (Pharmaceutical Sciences)

เอกสารอ้างอิง

Aslam MS, Ahmad MS, Mamat AS. A Phytochemical, ethnomedicinal and pharmacological review of genus Dipterocarpus. Int J Pharm Pharm Sci 2015; 7(4), 27-38.

Balasundram N, Sundram L, Samman S. Phenolic compounds in plants and agri-industrial by-products: Antioxidant activity, occurrence, and potential uses. Food Chem 2006; 99(1), 191-203.

Chen L, Hu J, Wang S. The role of antioxidants in photoprotection: A critical review. J Am Acad Dermatolo 2012; 67, 1013-1024.

Chime SA, Kenechukwu FC, Attama AA. Nanoemulsions: advances in formulation, characterization, and applications in drug delivery. Application of Nanotechnology in Drug Delivery 2014, Retrieved March 2, 2021. from https://dx.doi.org/10.5772/15371

Clares B, Calpena AC, Parra A, Abrego G, Alvarado H, Fangueiro JF, et al. EB. Nanoemulsions (NEs), liposomes (LPs) and solid lipid nanoparticles (SLNs) for retinyl palmitate: Effect on skin permeation. Int J Pharm 2014 473(1), 591–598.

Donsì F, Sessa M, Mediouni H, Mgaidi A, Ferrar G. Encapsulation of bioactive compounds in nanoemulsion- based delivery systems. Procedia Food Sci 2001; 1: 1666–1671.

Escobar-Chávez J, Díaz R, Rodriguez-Cruz IM, Dominguez-Delgado, Sampere-Morales, Angeles-Anugiano, et al. Nanocarriers for transdermal drug delivery. Res Rep Transdermal Drug Deliv 2012; 1, 3–17.

Fanun M. Colloid in drug delivery, Surfactant Science Series Vol., 2010, Boca Raton, FL: Taylor & Francis/CRC Press.

Kammeyer A, Luiten RM. Oxidation events and skin aging. Ageing Res Rev 2015; 21, 16-29.

Lathsamee T, Khunkitti W, Sakloetsakun D. Preparation and characterization of polymeric nanoparticles loaded with Yang-na oleoresin (Dipterocarpus alatus Roxb. Ex G. Don) [master’s thesis]. Graduate school: Khon Kaen University, 2018.

Maleelai W. Study of physical properties and development of skin lightening product from Raphanus sativus extract [master’s thesis]. Graduate school: Khon Kaen University; 2019.

Mostafa DM, Kassem AA, Asfour MH, Okbi SYA, Mohamed DA, Hamed TES. Transdermal cumin essential oil nanoemulsions with potent antioxidant and hepatoprotective activities: In-vitro and in-vivo evaluation. J Mol Liq 2015; 212, 6-15

Nipaporn N, Somporn K, Nattida, W. The study of antioxidant capacity of ethanolic extracts from Yang-na tree (Dipterocarpus alatus Roxb. Ex G. Don). Proceeding of the 2nd NEU National and International Research Conference 2014 May 24; Khon Kean, Thailand.

Ostolska I, Wiśniewska M. Application of the zeta potential measurements to explanation of colloidal Cr2O3 stability mechanism in the presence of the ionic polyamino acid. Colloid Polym Sci 2014; 292(10): 2453-2464.

Petcharoen K., Sirivat A. Synthesis and characterization of magnetite nanoparticles via the chemical co-precipitation method. Mat Sci Eng B 2012, 177: 421-427.

Ramrit T, Yingngam B, Rungseevijitprapa W. Development of Triphala niosomes. IJPS 2014; 9(Supplement), 22-26.

Salopek B, Krasić D, Filipowić S. Measurement and application of zeta-potential. Rudarsko-Geolosko-Naftni Zbornik 1992; 4:147–151.

Sutin S. Vitamins and free Radicals [Master thesis]. Division of Physical Science, Faculty of Science and Technology: Huachiew Chalermprakiet University, Samutprakarn; 2016.

Silva HD, Miguel A, Cerqueira, Souza BWS, Ribeiro C, Maria C, et al. Nanoemulsions of ß-carotene using a high-energy emulsification-evaporation technique. J Food Eng 2011; 102(2), 130-135.

Tadros TF. Formulation of Dispense Systems: Science and Technology 2014. Weinheim, Germany: Wiley-VCH.

Tuoriniemi J, Johnson A-C J, Holmberg JP, Gustafsson S, Gallego-Urrea JA, Olsson E, et al. Intermethod comparison of the particle size distributions of colloidal silica nanoparticles. Sci Technol Adv Mater 2014; 15(3), 1-11.

Ud-Daula AS, Demirci F, Salim KA, Demirci B, Lim LB, Baser KHC, et al. Chemical composition, antioxidant and antimicrobial activities of essential oils from leaves, aerial stems, basal stems, and rhizomes of Elingera fimbriobracteata (K. Schum). RM SM. Ind Crops and Prod 2016; 84, 189-198.