การทดสอบความเป็นพิษต่อเซลล์ของสารสกัดจากเสลดพังพอนตัวผู้
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
เสลดพังพอนตัวผู้เป็นพืชสมุนไพรตามตำรับยาพื้นบ้านที่มีสรรพคุณที่หลากหลาย โดยวัตถุประสงค์ของงานวิจัยนี้เพื่อศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ความเป็นพิษต่อเซลล์เพาะเลี้ยงและเม็ดเลือดแดงของมนุษย์จากสารสกัดจากเสลดพังพอนตัวผู้ วิธีดำเนินงานวิจัย: สกัดเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยน้ำ เอทานอลและเมทานอล และวัดปริมาณสารประกอบฟีนอลิกด้วยวิธี Folin-Ciocalteu จากนั้นทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH), ทดสอบความเป็นพิษในเซลล์เพาะเลี้ยง Human keratinocyte (HaCaT) และ African green monkey kidney (Vero) ด้วยวิธี MTT assay นอกจากนี้ทดสอบความเป็นพิษต่อเซลล์เม็ดเลือดแดงของมนุษย์ด้วยวิธี hemolytic activity ผลการวิจัย: ผลการตรวจสอบสารประกอบฟีนอลิกของสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยน้ำ เอทานอลและเมทานอลมีค่าเท่ากับ 73.89 ± 0.50, 57.83 ± 3.13 และ 83.64 ± 0.60 มิลลิกรัม แกลลิกต่อ 1 กรัมของสารสกัด ตามลำดับ และมีการทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH พบว่าสารสกัดจากเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยน้ำความเข้มข้น 31.25-1,000 ไมโครกรัมต่อไมโครลิตร สามารถยับยั้งอนุมูลอิสระโดยมีลักษณะแปรตามความเข้มข้นคือ 9.86-26.00% สารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยเอทานอลสามารถยับยั้งอนุมูลอิสระได้คือ 10.04-18.17%และสารสกัดด้วยเมทานอลมีค่าเท่ากับ 5.29-23.31% และผลของการทดสอบความเป็นพิษของสารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ต่อเซลล์เพาะเลี้ยงพบว่าไม่มีความเป็นพิษต่อเซลล์ HaCaT และ Vero หรือมีความเป็นพิษต่อเซลล์น้อยมาก จากนั้นทำการทดสอบความเป็นพิษของสารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ต่อเซลล์เม็ดเลือดแดงของมนุษย์ พบว่าสารสกัดสารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยน้ำ มี % hemolysis เท่ากับ 3.13-2.60% และสารสกัดด้วยเมทานอลมี % hemolysis เท่ากับ 3.65-10.99% ส่วนสารสกัดด้วยเอทานอลมี % hemolysis เท่ากับ 3.96-16.92% ซึ่งสารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ไม่มีความเป็นพิษในความเข้มข้นต่ำแต่มีความเป็นพิษน้อยเมื่อเพิ่มความเข้มข้นสูงขึ้นเมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มควบคุมบวก (Positive control) ที่ได้รับเฉพาะ 1% Triton X-100 สรุปผลการวิจัย: สารสกัดเสลดพังพอนตัวผู้ด้วยน้ำ เอทานอลและเมทานอลมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ไม่มีความเป็นพิษหรือเป็นพิษน้อยต่อเซลล์เพาะเลี้ยงและเซลล์เม็ดเลือดแดงของมนุษย์
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Agatonovic-Kustrin S, Doyle E, Gegechkori V, Morton DW. High-performance thin-layer chromatography linked with (bio) assays and FTIR-ATR spectroscopy as a method for discovery and quantification of bioactive components in native Australian plants. J Pharm Biomed Anal 2020; 184: 113208.
Chaithada P, Supapan J, Supapan J, Rodthuk P, Rodthuk P, Chainarong S, Chainarong S. Total flavonoids, total phenolic content and antioxidant activity from fruits, leaves, twigs and flowers of Mesua ferrea L. Walailak J Sci & Tech 2018; 15(4): 295-304.
Chomnawang MT, Surassmo S, Wongsariya K, Bunyapraphatsara N. Antibacterial activity of Thai medicinal plants against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Fitoterapia 2009; 80: 102-104.
Gironi B, Kahveci Z, McGill B, Lechner BD, Pagliara S, Metz J, Morresi A, Palombo F, Sassi P, Petrov PG. Effect of DMSO on the mechanical and structural properties of model and biological membranes. Biophys J 2020; 119: 274-286.
Ismail-Suhaimy NW, Gani SSA, Zaidan UH, Halmi MIE, Bawon P. Optimizing conditions for microwave-assisted extraction of polyphenolic content and antioxidant activity of Barleria lupulina Lindl. Plants 2021; 10(4): 682.
Kumari R, Dubey RC. Phytochemical analysis and antibacterial and cytotoxic properties of Barleria lupulina Lindl. extracts. J Plant Pathol Microbiol 2016; 7(10): 380.
Kumari R, Kumar S, Kumar A, Goel KK. Dubey C. Antibacterial, antioxidant and immuno-modulatory properties in extracts of Barleria lupulina Lindl. BMC Complement Altern Med 2017; 17(1): 484.
Lans C, Harper T, Georges K, Bridgewater E. Medicinal and ethnoveterinary remedies of hunters Trinidad. BMC Complement Altern Med 2001; 1: 10.
Lasch P, Boese M, Pacifico A, Diem M. FT-IR spectroscopic investigations of single cells on the subcellular level. Vib Spectrosc 2002; 28: 147-157.
Lee SR, Clardy J, Senger DR, Cao S, Kim KH. Iridoid and phenylethanoid glycosides from the aerial part of Barleria lupulina. Rev Bras Farmacogn 2016; 26: 281-284.
Mazumder PM, Paramaguru R, Mohanty A, Sasmal, D. Evaluation of in vitro anticataract activity and aldose reductase potential of Barleria lupulina Lindl. Pharmacologia 2014; 5(5): 172-176.
Moin S, Babu SS, Mahalakshmipriya A. In vitro callus production and antibacterial activity of Barleria lupulina lindl. Asia Pac J Mol Biol Biotechnol 2012; 20: 59-64.
Moosavinejad SM, Madhoushi M, Vakili M, Rasouli D. Evaluation of degradation in chemical compounds of wood in historical buildings using ft-ir and ft-raman vibrational spectroscopy. Maderas, Cienc tecnol 2019; 21(3): 381-392.
Movasaghi Z, Rehman S, Rehman DI. Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy of biological tissues. Appl Spectrosc Rev 2008; 43: 134-179.
Phosri S, Jangpromma N, Chang LC, Tan GT, Wongwiwatthananukit S, Maijaroen S, Anwised P, Payoungkiattikun W, Klaynongsruang S. Siamese crocodile white blood cell extract inhibits cell proliferation and promotes autophagy in multiple cancer cell lines. J Microbiol Biotechnol 2018; 28(6): 1007-1021.
Rattanakiat, S. Anti-herpes simplex virus type 2 activities of some Thai medicinal plants. Thai J Pharm Sci 2006; 30: 19-27.
Reanmongkol W, Subhadhirasakul S. Antinociceptive effects of Barleria lupulina extracts in mice. Songklanakarin J Sci Technol 1997; 19(2): 89-95.
Reanmongkol W, Subhadhirasakul S, Muneemonai K, Nathong K, Rangkla G, Takayama H. Antipyretic activity of Connarus semidecandrus extract in rats. Songklanakarin J Sci Technol 2000; 2(2): 191-198.
Salmana A, Sahua RK, Bernshtainb E, Zeliga U, Goldsteinc J, Walfischd S, Argovc S, Mordechai S. Probing cell proliferation in the human colon using vibrational spectroscopy: a novel use of FTIR-microspectroscopy. Vib Spectrosc 2004; 34: 301-308.
Sarmad M, Mahalakshmipriya A, Senthil K. Chemical composition and in vitro antimicrobial activity of Barleria lupulina essential oil. J Herbs Spices Med Plants 2012; 18: 101-109.
Satrayavivad J, Suksamran A, Tanasomwong W. The antiinflammatory action of iridoids obtained from Barleria lupulina. Princess Congress I 1987; 26: 10-13.
Senger DR, Hoang MV, Kim KH, Li C, Cao S. Anti-inflammatory activity of Barleria lupulina : Identification of active compounds that activate the Nrf2 cell defense pathway, organize cortical actin, reduce stress fibers, and improve cell junctions in microvascular endothelial cells. J Ethnopharmacol 2016; 193: 397-407.
Suba V, Murugesan T, Arunachalam G, Mandal SC, Saha BP. Anti-diabetic potential of Barleria lupulina extract in rats. Phytomedicine 2004; 11(2-3): 202-205.
Suksamrarn S, Wongkrajang K, Kirtikara K, Suksamrarn A. Iridoid glucosides from the flowers of Barleria lupulina. Planta Med 2003; 69: 877-879.
Wanikiat P, Panthong A, Sujayanon P, Yoosook C, Rossi AG, Reutrakul V. The anti-inflammatory effects and the inhibition of neutrophil responsiveness by Barleria lupulina and Clinacanthus nutans extracts. J Ethnopharmacol 2008; 116(2): 234-244.
Yoosook C, Panpisutchai Y, Chaichana S, Santisuk T, Reutrakul V. Evaluation of anti-HSV-2 activities of Barleria lupulina and Clinacanthus nutans. J Ethnopharmacol 1999; 67(1999): 179-187.
Zavoi S, Fetea F, Ranga F, Pop RM, Baciu A, Socaciu C. Comparative fingerprint and extraction yield of medicinal herb phenolics with hepatoprotective potential, as determined by UV-vis and FT-MIR spectroscopy. Not Bot Horti Agrobo 2011; 39(2): 82-89.
Zelig U, Kapelushnik J, Moreh R, Mordechai S, Nathan I. Diagnosis of Cell Death by Means of Infrared Spectroscopy. Biophys J 2009; 97: 2107-2114.
