สารเพิ่มความคงตัวเพื่อเพิ่มความเข้มข้นและความคงตัวของนิโอโซม

Main Article Content

บัญชา ยิ่งงาม
ณัฐพันธุ์ ศุภกา
วันดี รังสีวิจิตรประภา

บทคัดย่อ

บทนำ: นิโอโซมมีแนวโน้มที่จะเป็นตัวพาสำหรับนำส่งสารออกฤทธิ์ทางเครื่องสำอางและมักจะนำไปกระจายในอิมัลชันหรือเจลพื้นก่อนทาบนผิวหนัง อย่างไรก็ตามปัญหาหนักที่พบเมื่อใช้นิโอโซมเป็นระบบนำส่งคือ การมีนํ้าจำนวนมากเป็นส่วนประกอบในตำรับ ส่งผลให้สารออกฤทธิ์มีอยู่ในความเข้มข้นที่ต่ำมากและอาจจะไม่เพียงพอที่จะเกิดประสิทธิภาพแก่ผิวหนัง ในการศึกษานี้สารเพิ่มความคง ตัวที่เหมาะสมจึงถูกศึกษาเพื่อเพิ่มความเข้มข้นและปรับปรุงเสถียรภาพของนิโอโซม วัสดุและวิธีการทดลอง: นิโอโซมเปล่าและนิโอโซม กักเก็บสารสกัดถั่วเหลืองความเข้มข้น 0.5 %w/v เตรียมโดยวิธีเตรียมฟิล์มและลดขนาดอนุภาคด้วยการปนละเอียดโดยใช้ความดันสูง ตำรับที่ได้นำมาทำให้แห้งแบบเยือกแข็งเพื่อให้เป็นผงแห้ง โดยปัจจัยที่ศึกษาประกอบด้วยอัตราส่วนระหว่างสารเพิ่มความตัวต่อปริมาณ ไขมัน ความเข้มข้นของไขมันโดยรวม ชนิดของสารเพิ่มความคงตัว และชนิดของสารลดแรงตึงผิว ผลการศึกษา: ผลการศึกษาพบว่า การระเหยแห้งแบบเยือกแข็งของตำรับนิโอโซมโดยใช้น้ำตาลกลูโคส แมนนิทอล กลีเซอรอล และทรีฮาโลสต่อปริมาณไขมันโดยรวมใน อัตราส่วนโดยนี้าหนักเท่ากับ 1:3, 1:3, 1:5 และ 1:5 ท่าให้นิโอโซมคืนรูปได้ดีและมีอนุภาคกระจายอย่างสม่ำเสมอ นิโอโซมที่ได้สามารถ เพิ่มความเข้มข้นขึ้นได้ถึง 10 เท่าเมื่อผสมน้ำตาลทรีฮาโลส กลีเซอรอลและกลูโคส ขณะที่ความเข้มข้นที่เพิ่มขึ้นจะต่ำกว่าเมื่อใช้น้ำตาล แมนนิทอล (2 เท่า) ในทางตรงกันข้ามการระเหยแห้งแบบเยือกแข็งที่ไม่เติมสารเพิ่มความคงตัวมีผลเพิ่มขนาดอนุภาคแก่นิโอโซมทุกตำรับที่ทดสอบอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P < 0.05) สรุปผล: การระเหยแห้งแบบเยือกแข็งร่วมกับการใช้สารเพิ่มความคงตัวให้แก่อนุภาคที่เหมาะสมมีประสิทธิภาพในการเพิ่มความเข้มข้นและเพิ่มความคงตัวให้แก่ตำรับนิโอโซมได้

Article Details

ประเภทบทความ
Appendix

เอกสารอ้างอิง

Chen c, Han D, Cai c, et al. An overview of liposome lyophilization and its future potential. J Controlled Re/2010; 142(3): 299-311.

Crowe JH, Spargo BJ, Crowe LM. Preservation of dry liposomes does not require retention of residual water. Proc Natl Acad Sci USA 1987; 84: 1537¬1540.

Guan T, Miao Y, Xu L., et al. Injectable nimodipine-loaded nanoliposomes: preparation, lyophilization and characterization. Int J Pharm 2011; 410(1-2): ISO- 187.

Kim KR, Ahn KY, Park JS, et al. Lyophilization and enhanced stability of fluorescent protein nanoparticles. Biophem Biophys Res Commun 2011; 408(2): 225-229.

Li F, Wang T, He HB, et al. The properties of bufadienolides-loaded nano-emulsion and submicro¬emulsion during lyophilization. Int J Pharm 2008; 349(1-2): 291-299.

Tiyaboonchai W, Tungpradit W, Plianbangchang p.

Formulation and characterization of curcuminoids loaded solid lipid nanoparticles. Int J Pharm 2007; 337(1-2): 299-306.

Vauthier c, Cabane B, Labarre D. How to concentrate nanoparticles and avoid aggregation. Eur J Pharm Blopharm 2008; 69(2): 466-475.

Wang T, Wang N, Hao A, et al. Lyophilization of water-in- oil emulsions to prepare phospholipid-based anhydrous reverse micelles for oral peptide delivery. Eur J Pharm Sci 2010; 39(5): 373-379.

Yingngam B, Supaka N, Rungseevijiprapa พ. Efficacy for delaying the loss of skin elasticity of fermented soy extract encapsulated nano-, micro-niosomes and conventional gel. Proceeding of the 3rd North Eastern Pharmacy Conference, 2011 Feb 13-14; Ubon Ratchathani, Thailand.

Yingngam B, Supaka N, Rungseevijitprapa W. Influence of vesicle sizes on skin permeation of dual flavonoids loaded niosomes. Proceeding of the Pure and Apply Chemistry Organic Conference, 2010 Jan 21-23; Ubon Ratchathani, Thailand.

Zillies JC, Zwiorek K, Hoffman F, et al. Formulation development of freeze-dried oligonucleotide-loaded gelatin nanoparticles.. Eur J Pharm Blopharm 2008; 70(2): 514-521.