การต้านออกซิเดชันและการยับยั้งเชื้อแบคทีเรียก่อโรคของสารสกัดจากเปลือกและเมล็ดองุ่น
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
กากองุ่นคือเปลือกและเมล็ดองุ่นที่เป็นวัสดุเศษเหลือจากอุตสาหกรรมการผลิตไวน์หรือน้ำองุ่นได้มีการศึกษาพบว่าสารสกัดจากเปลือกและเมล็ดองุ่นมีสารองค์ประกอบที่มีประสิทธิภาพในการต่อต้านอนุมูลอิสระ สามารถยับยั้งเชื้อได้หลายชนิด ดังนั้นงานวิจัยนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาถึงความสามารถของสารสกัดจากเปลือกและเมล็ดองุ่นด้วยตัวทำละลาย 3 ชนิด ได้แก่ น้ำ pH 3 เอทานอล และ อะซีโตน ในการต่อต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี 2,2-Diphenly-1-picrylhydrazyl (DPPH), Lipid peroxidation, Ferric ion Reducing Power Assay (FRAP) และการทดสอบฤทธิ์ยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียก่อโรค 4 ชนิด คือ Staphylococcus epidermidis, Bacillus Subtilis, Staphylococcus aureus และ Escherichia coli วิธีดำเนินการ: ทำการสกัดสารจากเปลือกและเมล็ดองุ่นด้วยตัวทำละลาย 3 ชนิดแล้วนำไปวิเคราะห์หาปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด ทดสอบฤทธิ์การต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH, Lipid peroxidation, และ FRAP แล้วทำการทดสอบฤทธิ์ยับยั้งการเจริญเติบโตและฤทธิ์ฆ่าเชื้อแบคทีเรียด้วยวิธี broth dilution และ agar diffusion assay ผลการศึกษา: สารสกัดจากเปลือกด้วยน้ำปรับ pH 3 และเมล็ดองุ่นด้วยเอทานอล ให้ปริมาณ yield สูงสุด เท่ากับ 10.032 ± 0.104 และ 9.765 ± 0.144 w/w การสกัดด้วยเอทานอลมีประสิทธิภาพในการสกัดสูงที่สุด โดยปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมดในเมล็ดเท่ากับ 34.20 ± 0.001 และเปลือกเท่ากับ 32.16 ± 0.001 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิค ต่อตัวอย่างแห้ง 1 กรัม เมื่อทดสอบเปรียบเทียบประสิทธิภาพการเป็นสารต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากเปลือกและเมล็ดองุ่นพบว่าสารสกัดจากเมล็ดด้วยเอทานอล ให้ประสิทธิภาพในการเป็นสารต้านอนุมูลอิสระมากกว่าเปลือก โดยค่าที่ได้มีความสัมพันธ์กับ IC50 และปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมด และมีประสิทธิภาพในการยับยั้งเชื้อแบคทีเรียจากมากไปน้อยดังนี้คือ B. Subtilis, E. coli, S. aureus และ S. epidermidis สรุปผล: สารสกัดจากเปลือกและเมล็ดองุ่นมีประสิทธิภาพในการต้านอนุมูลอิสระและยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคบางชนิดได้
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Bao J, Cai Y, Sun M, Wang G, Corke H. Anthocyanins, flavonoids and free radical scavenging activity on Chinese bayberry (Myricarubra) extracts and their color properties and stability. J Agri Food Chem. 2005; 53: 2327-32.
Guerrero RF, Liazid 1 Palma M, Puertas . Barrio G, Gil-Izquierdo A, et al., Phenolic characterization of red grapes autochthonous to Andalusa. Food Chem. 2009; 112: 949-955.
Huang DJ, Ou BX, Prior RL. The chemistry behind antioxidant capacity assays. J Agri Food Chem. 2005; 3(6): 1841-56.
Jayaprakasha GK, Selvi T, Sakariah KK, Antibacterial and antioxidant activities of grape (Vitis vinifera) extracts. Food Res Inter 2003; 36: 117-122.
Katalinic V, SmoleMozina S, Skroza D, Generalic I, Abramovic H, Milos M, et al. Polyphenolic profile, antioxidant properties and antimicrobial activity of grape skin extracts of 14 Vitis vinifera varieties grown in Dalmatia (Croatia). Food Chem. 2010; 119: 715-23.
Kim DO, Lee CY. Extraction and isolation of polyphenolics. Current Protocols in Food Analy tical Chemistry. R.E. Wrolstad. New York; Wiley. 2002.
Kim TJ, Silva JL, Weng WL, Chen w w , Corbitt M, Jung YS, et al., In a c tivation of Enterobactorsakazakii by water-soluble muscadine seed extracts. Inter J Food Microbio. 2009; 129: 295-299.
Lee JH, Talcott ST, Fruit maturity and juice extraction influences ellagic acid derivatives and other anti oxidantpolyphenolics in muscadine grapes. Food Chem. 2004; 52: 361-366.
Malovana S, Montelongo FJG, Rodriguez-Delgado MA, Optimisation of sample preparation for the determination of trans-resveratrol and other poly phenolic compounds in wines by high performance liquid chromatography. Analy chim Acta. 2001; 428: 245-253.
Microbial population count [online]. 2010 Dec 31 [cited 2013 Dec 1]. Available from: http://science.kmutt.ac.th/class/mic291/mic291lab7.doc
Passos CP, Yilmaz S, Silva CM, Coimbra MA, Enhancement of grape seed oil extraction using a cell wall degrading enzyme cocktail. Food Chem. 2009; 115: 48-53.
Poudel PR, Tamura H, Kataoka I, Mochioka R. Phenolic compounds and antioxidant activies of skin and seeds of five wild grapes and two hybrids native to Japan. J Food Comp Ana. 2008; 21: 622-5.
Rafaela GM, Gloria LM, Monica G, Antioxidant activity in banana peel extracts: Testing extraction conditions and related bioactive compounds. Food Chem. 2010; 119: 1030-1039.
Rupasinghe V, Clegg HPS, Total antioxidant capacity, total phenolic content, mineral elements and histamine concentration in wines of different fruit sources. J Agri Food Chem. 2007; 40: 210-15.
Shoko T, Soichi T, Megumi MM, Erl F, Jun K, Michiko W. Isolation and Identification of an antibacterial compound from grape and it application to food . Nippon NogeikagakuKaishi. 1999; 73: 125-8.
Stalikas CD. Extraction, separation, and detection methods for phenolic acids and flavonoids. J Sep Sci. 2007; 30(18): 3268-95.
Torrungruang K, Vichienroj P, Chutimaworapan S, Antibacterial activity of mangosteen pericarp extract against cariogenic Streptococcus mutans. Chula Univ Dent. 2007; 30:1-10.
Vatterm DA, Lin YT, Shetty LK. Antimicrobial activity against select food-boms pathogens by phenolic antioxidants enriched in cranberry pomace by solid-state bioprocessing using the food grade fungus Rhlzopus oligosporus. Proc Biochem. 2004; 39: 1939-46.
Vine RP. Commercial Wine making, Process and Control. London: Chapman and Hall; 1981.
Xu c , Yali z, LeiC, Jiang L. Phenolic compounds and antioxidant properties of different grape cultivars grown in China. Food Chem. 2010; 119(4): 1557-65.
Yilmaz Y, Toledo RT. Oxygen radical absorbance capacities of grape/wine industry by products and effect of solvent type on extraction of grape seed polyphenols. J Food Comp Ana. 2006; 19: 41-4.
Zhao B. and Hall C.A., Composition and antioxidant activity of raisin extracts obtained from various solvents. Food Chemistrty. 2008; 108: 511-518.
