ผลของ Lactobacillus brevis ต่อการซ่อมแซมเนื้อเยื่อผิวหนัง: ฤทธิ์ต้านออกซิเดชันฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์คอลลาจีเนส และการกระตุ้นการเพิ่มจำนวนเซลล์ไฟโบรบลาส
Main Article Content
บทคัดย่อ
เชื้อโปรไบโอติกสายพันธุ์ Lactobacillus sp. ถูกนำมาใช้ประโยชน์เพื่อสุขภาพในหลากหลายรูปแบบ การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของ Lactobacillus brevis (L. brevis) ต่อปัจจัยที่มีผลต่อกระบวนการซ่อมแซมเนื้อเยื่อผิวในระยะการแบ่งตัว (proliferation) โดยศึกษาเชื้อและองค์ประกอบของเชื้อ L. brevis ในการต้านออกซิเดชัน การยับยั้งการทำงานของเอนไซม์คอลลาจีเนส และความสามารถในการกระตุ้นการแบ่งตัวของเซลล์ไฟโบรบลาส ในการศึกษาฤทธิ์ต้านออกซิเดชันด้วยวิธี FRAP และ ABTS พบว่า intact cell 109 cfu/ml และ intracellular cell free extract 109 cfu/ml มีฤทธิ์ต้านออกซิเดชันแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติเมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มควบคุม การศึกษาฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์คอลลาจีเนส ผลการศึกษาพบว่า extracellular extract มีเปอร์เซ็นต์การยับยั้งเอนไซม์คอลลาจีเนสดีที่สุด คือเท่ากับร้อยละ 57.10±14.60 และการศึกษาการเพิ่มการแบ่งตัวของเซลล์ไฟโบรบลาสพบว่า พบว่า intracellular cell free extract มีแนวโน้มในการเพิ่มการแบ่งตัวขอเซลล์ไฟโบรบลาส ส่วน extracellular extract สามารถเพิ่มการแบ่งตัวของเซลล์ไฟโบรบลาสได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ผลการศึกษาแสดงถึงฤทธิ์ต้านออกซิเดชันของ L. brevis รวมถึงความสามารถในการยับยั้งเอนไซม์คอลลาจีเนส และผลต่อการแบ่งตัวของเซลล์ ผลโดยรวมอาจเป็นประโยชน์ต่อการศึกษาเชิงลึกต่อไปในการพัฒนาผลิตภัณฑ์จาก L. brevis ที่ใช้ในการดูแลผิวหนังต่อไปได้
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Armstrong DG, Jude EB. The role of matrix met¬alloproteinases in wound healing. J Am Pediatr Med Assoc 2002; 92(1): 12-18.
Benzie IFF, Strain JJ. The Ferric Reducing Abil¬ity of Plasma (FRAP) as a Measure of Antioxidant Power: The FRAP Assay. Anal Biochem 1996; 239(0292): 70-76.
Biljana E, Boris V, Cena D, Stefkovska DV. Matrix metalloproteinases (with accent to col¬lagenase). J Cell Anim Biol 2011; 5(7): 113-120.
Cadenas E. Mechanisms of oxygen activation and reactive oxygen species detoxification. In: Ahmad S, editor. Oxidative stress and antioxidant defenses in biology. USA: Chapman & Hall: 1995. 1-2.
Fisher GJ, Varani J, Voorhees JJ. Looking older: Fibroblast collapse and Therapeutic Im¬plications. Arch Dermatol 2008; 144(5): 666-672.
Holbrook KA. Structure and Development of the Skin. In: Soter NA, Baden HP, editors. Pathophysiology of dermatologic dis¬ease. 2nd ed. USA: McGraw-Hill; 1991. 1-9.
Kang BS, Seo JG, Lee GS, Kim JH, Kim SY, Han YW, et al. Antimicrobial activity of ente¬rocins from Enterococcus faecalis SL-5 against Propionibacterium acnes, the causative agent in acne Vulgaris, and Its therapeutic effect. J. Microbiol 2009; 47(1):101-109.
Kim HS, Chae HS, Jeong SG, Ham JS, Im SK, Ahn CN et al. In vitro antioxidative prop¬erties of Lactobacilli. Asian-Aust. J. Anim. Sci 2006; 19(2): 262-5.
Li J, Chen J, Kirsner R. Pathophysiology of acute wound healing. Clin Dermatol 2007; 25: 9-18.
Li S, Zhao Y, Zhang L, Zhang X, Huang L, Li D et al. Antioxidant activity of Lactobacillus plantarum strains isolated from tradi¬tional Chinese fermented foods. Food Chem 2012; 135: 1914-1919.
Lin MY, Chang FJ. Antioxidative effect of intesti¬nal bacteria Bifidobacterium longum ATCC 15708 and Lactobacillus acido¬philus ATCC 4356. Dig Dis Sci 2000; 45(1): 1617-22.
Lin MY, Yen CL. Antioxidative ability of lactic acid bacteria. J Agric. Food Chem. 1999; 47: 1460-1466.
Marzio LD, Centi C, Cinque B, Masci S, Giuliani M, Arcieri A, et al. Effect of the lactic acid bacterium Streptococcus thermophilus on stratum corneum ceramide levels and signs and symptoms of atopic dermatitis patients. Exp Dermatol 2003; 12: 615- 620.
Messaoudi DF, Berger CN, Polter MHC, Moal VLL, Servin AL. pH-, Lactic acid-, and non-lactic acid-dependent activities of Probiotic Lactobacilli against Salmonella enteric Serovar Typhimurium. Appl. En¬viron. Microbiol 2005; 71(10): 6008-13.
Niyomploy P, Thunyakitpisal P, Karnchanatat A, Sangvanich P. Antioxidant activity and cell proliferation of crude polysaccharide from rhizome of Curcuma aromatic Salisb. Proceedings of 47th Kasetsart University Annual Conference: Science, 2009 Mar 17-20; Bangkok, Thailand.
Ouwehand AC, Salminen S, Isolauri E. Probiotics: an overview of beneficial effects. Antonie Van Leeuwenhoek 2002; 82: 279-289.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Evans C R. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol Med 1999; 26: 1231-1237.
Satsue S, Thapphasaraphong S, Damrongrung-ruang T. Antioxidant and collagen stimu¬lating activities in human gingival fibrob¬last cell culture of plant extracts, IJPS 2014 Jan; 9 (Suppl) : 38-43.
Sekhon BS. Matrix metalloproteinases an over¬view. Research and reports in biology 2010; 1: 1-20.
Shalaby EA, Shanab SMM. Antioxidant com¬pounds, assays of determination and mode of action. Afr. J. Pharm. Pharmacol 2013; 7(10): 528-539.
Srisayam M, Weerapreeyakul N, Sribuarin P. In vitro antioxidant activity of white, black and red sesame seeds. IJPS 2014; 10(2): 136-146.
Thring TSA, Hili P, Naughton DP. Anti-colla¬genase, anti-elastase and anti-oxidant activities of extracts from 21 plants. BMC COMPLEM ALTERN M 2009; 9(27): 1-11.
West CE, Hammarstrom ML, Hernell O. Probiot¬ics during weaning reduce the incidence of eczema. Pediatr Allergy Immunol 2009; 20: 430-7.
Zahedi F, Nasrabadi MH, Ebrahimi MT, Shabani M, Aboutalebi H. The effect of lactobacil¬lus brevis isolated from Iranian tradi¬tional cheese on cutaneous wound healing in rats. J Cell Anim Biol 2011; 5(12): 265-70.