สารสกัดว่านชักมดลูกที่กักเก็บในระบบตัวพาไขมันแข็งขนาดนาโนเมตร เพื่อเพิ่มการดูดซึมผ่านผิวหนัง
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทนำ: ว่านชักมดลูกประกอบด้วยสารไฟโตเอสโตรเจนที่มีรายงานถึงฤทธิ์ทางชีวภาพหลายประการ แต่ยังมีการศึกษาเพื่อใช้ทางผิวหนังอยู่น้อยและยังไม่มีรายงานถึงศักยภาพการเป็นเวชสำอางอย่างเป็นระบบ ดังนั้นการศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อทดสอบฤทธิ์ทางชีวภาพต่อผิวหนังรวมถึงพัฒนาตัวพาไขมันแข็งขนาดนาโนเมตร (NLC) เป็นระบบนำส่งสารสกัดผ่านผิวหนัง วิธีดำเนินการวิจัย: สกัดว่านชักมดลูกเพื่อให้ได้สารออกฤทธิ์ด้วย n-hexane ทดสอบฤทธิ์ทางชีวภาพต่อผิวหนังได้แก่ antioxidant, tyrosinase และ collagenase inhibition ในหลอดทดลอง พัฒนา NLC โดยศึกษาปัจจัยของชนิดไขมันแข็ง ไขมันเหลวและสารช่วยการซึมผ่าน ต่อคุณลักษณะอนุภาค ร้อยละการกักเก็บ คุณสมบัติการเปลี่ยนแปลงทางความร้อน ความสามารถการซึมผ่านผิวหนังทาง in vitro ด้วย Franz diffusion cell และทดสอบความคงตัวของตำรับ ผลการวิจัย: สารสกัดว่านชักมดลูกด้วย n-hexane มีลักษณะเป็นไขกึ่งแข็งประกอบด้วยสารไฟโตเอสโตรเจนในปริมาณสูง แสดงฤทธิ์ทางชีวภาพต่อผิวหนังค่อนข้างอ่อน เมื่อพัฒนาเป็นอนุภาค NLC มีขนาดอนุภาคอยู่ในช่วง 120 – 170 nm, ดัชนีการกระจายขนาดที่ 0.25 - 0.29, ศักย์ไฟฟ้าที่ผิวอนุภาคประมาณ -20 mV และกักเก็บสารสำคัญมากกว่าร้อยละ 90 และมีความคงตัวดีเมื่อเก็บที่อุณหภูมิ 25 และ 40 ˚C เป็นเวลา 90 วัน จึงเป็นรูปแบบที่เหมาะแก่การนำส่งทางผิวหนัง ระบบ NLC สามารถนำส่งสารสำคัญผ่านผิวหนังได้ เมื่อทดสอบ in vitro ได้ค่าการซึมผ่านเพียง 3.2 – 5.3 % ที่ 24 ชั่วโมง ซึ่งเป็นข้อจำกัดของสารที่มีความชอบน้ำมันสูง สรุปผลการวิจัย: NLC เป็นระบบนำส่งสารสกัดว่านชักมดลูกที่สามารถพัฒนาได้คุณลักษณะที่เหมาะสมกับการนำส่งผ่านผิวหนัง ระบบนี้อาจพัฒนาเป็นระบบนำส่งผ่านผิวหนังหรือเพื่อหวังผลให้สารไฟโตเอสโตรเจนออกฤทธิ์เฉพาะที่เพื่อหลีกเลียงผลข้างเคียงแบบทั่วร่างได้
Article Details
กรณีที่ใช้บางส่วนจากผลงานของผู้อื่น ผู้นิพนธ์ต้อง ยืนยันว่าได้รับการอนุญาต (permission) ให้ใช้ผลงานบางส่วนจากผู้นิพนธ์ต้นฉบับ (Original author) เรียบร้อยแล้ว และต้องแนบเอกสารหลักฐาน ว่าได้รับการอนุญาต (permission) ประกอบมาด้วย
เอกสารอ้างอิง
Adithya ES, Lakshmi MS, Christabel PH, Sasikumar JM. In vitro antioxidant, anti-lipid peroxidation activities and HPLC analysis of methanol extracts from bark and stem of Mahonia leschenaultia takeda. Asian J Plant Sci Res 2013; 3(2): 116-126.
Almeida ED, Costa AA, Serafini MR, Rossetti FC, et al. Preparation and characterization of chloroaluminum
Chun KS, Sohn Y, Kim HS, Kim OH, et al. Anti-tumor promoting potential of naturally occurring diarylheptanoids structurally related to curcumin. Mutat Res 1999; 428(1-2): 49-57.
Frasor J, Barnett DH, Danes JM, Hess R, Parlow AF, Katzenellenbogen BS. Response-specific and ligand dose-dependent modulation of estrogen receptor (ER) alpha activity by ERbeta in the uterus. Endocrinology 2003; 144(7): 3159–3166.
Golden GM, McKie JE, Potts RO. Role of stratum corneum lipid fluidity in transdermal drug flux. J Pharm Sci 1987; 76(1), 25–28.
Gunasekaran T, Haile T, Nigusse T, Dhanaraju MD. Nanotechnology: an effective tool for enhancing bioavailability and bioactivity of phytomedicine. Asian Pac J Trop Biomed 2014; 4(Suppl 1): S1–S7.
Gunullu U, Uner M, Yener G, et al. Formulation and characterization of solid lipid nanoparticles, nanostructured lipid carriers and nanoemulsion of lornoxicam for transdermal delivery. Acta Pharm 2015, 65: 1-13.
Ichikawa K, Sasada R, Chiba K, Gotoh H. Effect of side chain functional groups on the DPPH radical scavenging activity of bisabolane-type phenols. Antioxidants 2019; 8(65).
Jantaratnotai N, Utaisincharoen P, Piyachaturawat P, et al. Inhibitory effect of Curcuma comosa on NO production and cytokine expression in LPS-activated microglia. Life Sci 2006, 78: 571-577.
Jeon SH, Kim KH, Koh JU, Kong KH. Inhibitory effects on L-Dopa oxidation of tyrosinase by skin-whitening agents, Bull Korean Chem Soc 2005; 26(7): 1135-1137.
Jinarat D, Yingngam B, Suksamrarn A, Rungseevijitprapa W. Development and characterization of Curcuma comosa extract loaded nanostructured lipid carriers. IJPS 2017;13(Supplement):163-172.
Katakam P, Kumari AP, Hwisa N, Chandu BR. Development of stability indicating media for in-vitro dissolution testing of didanosine in pharmaceutical dosage forms. Res Sci Tech. 2011; 3: 41-45.
Kopper NW, Gudeman J, Thompson DJ. Transdermal hormone therapy in postmenopausal women: A review of metabolic effects and drug delivery technologies. Drug Des Devel Ther 2009; 2: 193–202.
Küchler S, Herrmann W, Panek-Minkin G, Blaschke T, et al. SLN for topical application in skin diseases-characterization of drug-carrier and carrier-target interactions. Int J Pharm. 2010; 390(2):225-33.
Kundu S, Wang Y, Xia W, Mathur M. Thermal stability and reducibility of oxygen-containing functional groups on multiwalled carbon nanotube surfaces: A quantitative high-resolution XPS and TPD/TPR study. J. Phys. Chem. 2008;1129(43):16869-16878.
Markownikoff W. Ueber die Abhängigkeit der verschiedenen Vertretbarkeit des Radicalwasserstoffs in den isomeren Buttersäuren. Annalen der Pharmacie. 1870; 153 (1): 228–59.
N’Da D. Prodrug Strategies for enhancing the percutaneous absorption of drugs. Molecules 2014; 19(12): 20780–20807.
phthalocyanine-loaded solid lipid nanoparticles by thermal analysis and powder X-ray diffraction techniques. J Therm Anal Calorim. 2012; 108: 191–196.
Piyachaturawat P, Ercharuporn S and Suksamrarn A. Estrogenic activity of Curcuma comosa extract in rat, Asia Pac J Pharm 1995;10:121-126.
Prasanthi D, Lakshmi P K. Terpenes: Effect of lipophilicity in enhancing transdermal delivery of alfuzosin hydrochloride. J Adv Pharm Technol Res 2012;3(4):216–223.
Pritchard KI. Breast cancer prevention with selective estrogen receptor modulators: a perspective. Ann NY Ace sci 2001;949:89-98.
Rangsimawong W, Tansathien K, Nuntharatanapon N, Jaewjira S, Opanasopit P. Development of Pueraria mirifica extract-loaded lipid nanoparticles for hair spray. Thai Bull Pharm Sci 2017; 12(2):13-20.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, & Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol Med 1999; 26(9–10):1231–1237.
Sakdiset P, Kitao Y, Todo H, Sugibayashi K. High-throughput screening of potential skin penetration-enhancers using stratum corneum lipid liposomes: Preliminary evaluation for different concentrations of ethanol. J Pharm 2017;7409420.
Sator PG. Skin treatments and dermatological procedures to promote youthful skin. Clin Interv Aging 2006; 1(1): 51-6.
Sodsai A, Piyachaturawat P, Sophasan S, Suksamrarn A, Vongsakul M. Suppression by Curcuma comosa Roxb. of pro-inflammatory cytokine secretion in phorbol-12-myristate-13-acetate stimulated human mononuclear cells. Int Immunopharmacol 2007; 7: 524–531.
Souto EB, Müller RH. Cosmetic features and applications of lipid nanoparticles (SLN, NLC). Int J Cosmet Sci. 2008; 30(3): 157-65.
Su J, Sripanidkulchai K., Hu Y, Chaiittianan R, Sripanidkulchai, B. Increased In Situ Intestinal Absorption of Phytoestrogenic Diarylheptanoids from Curcuma comosa in Nanoemulsions. AAPS PharmSciTech 2013; 14(3): 1055–1062.
Su J, Sripanidkulchai K., Suksamrarn A., Hu Y, Piyachuturawat P,Sripanidkulchai B. Pharmacokinetics and organ distribution of diarylheptanoid phytoestrogens from Curcuma comosa in rats. J Nat Med 2012; 66(3): 468-475.
Suksamrarn A, Ponglikitmongkol M, Wongkrajang K, Chindaduang A, et al. Diarylheptanoids, new phytoestrogens from the rhizomes of Curcuma comosa: Isolation, chemical modification and estrogenic activity evaluation. Bioorg Med Chem 2008; 16(14): 6891-902.
Tantikanlayaporn D, Wichit P, Weerachayaphorn J, Chairoungdua A, et al. Bone Sparing Effect of a Novel Phytoestrogen Diarylheptanoid from Curcuma comosa Roxb. in Ovariectomized Rats. PLoS ONE 2013; 8(11): e78739
Thaipong K, Boonprakob U, Crosby K, Cisneros-Zevallos L, Byne DH. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts, J Food Comp Anal 2006; 19(6-7): 669-675.
Tuntiyasawasdikul S, Limpongsa E, Jaipakdee N, Sripanidkulchai B Effects of Vehicles and Enhancers on the Skin Permeation of Phytoestrogenic Diarylheptanoids from Curcuma comosa. AAPS PharmSciTech 2017; 18(3): 895-903.
Tuntiyasawasdikul S, Limpongsa E, Jaipakdee N, Sripanidkulchai B. Development and evaluation of topical films containing phytoestrogenic diaryheptanoids from Curcuma comosa extract. Drug Dev Ind Pharm 2018; 44(8): 1385–1394.
Watkins R, Wu L, Zhang C, Davis R, Xu B. Natural product-based nanomedicine: recent advances and issues. Int J Nanomed 2015: 6055-6074.
Winuthayanon W, Piyachaturawat P, Suksamrarn A, Ponglikitmongkol M, et al. Diarylheptanoid phytoestrogens isolated from medicinal plant Curcuma comosa: Biologic actions in vitro and in vivo indicate estrogen receptor-dependent mechanisms, Environ Health Perspec 2009; 11(7): 1155-1161.
Wissing SA, Müller RH. Cosmetic applications for solid lipid nanoparticles (SLN). Int J Pharm. 2003; 254: 65–68.
Yameen B, Choi WI, Vilos C, Swami A, et al. Insight into nanoparticle cellular uptake and intracellular targeting. J Control Release 2014; 190: 485-499.
Yingngam B, Brantner AH, Jinarat D, Kaewamatawong R, et al. Determination of the marker diarylheptanoid phytoestrogens in Curcuma comosa rhizomes and selected herbal medicinal products by HPLC-DAD. Chem Pharm Bull 2018; 66(1): 65-70.
Yingngam B, Rungseevijitprapa W. Molecular and clinical role of phytoestrogens as anti-skin-ageing agents: A critical overview. Phytopharmacology 2012; 3(2): 227-244.