การเหนี่ยวนำภาวะไขมันพอกตับในหนูทดลอง

Main Article Content

ชรินญา พิมพ์สอน
กนกวรรณ จารุกำจร

บทคัดย่อ

ภาวะไขมันพอกตับเกิดจากความผิดปกติของกระบวนการเมแทบอลิซึมในร่างกาย ที่มีไขมันโดยเฉพาะไตรกลีเซอไรด์พอกหรือสะสมอยู่ในเซลล์ตับโดยไม่ได้เป็นผลจากการดื่มสุราก่อให้เกิดความเสียหายต่อตับ บางระยะของพัฒนาการของโรคอาจพบการอักเสบของเนื้อตับร่วมด้วย ส่งผลให้เกิดภาวะตับแข็งและลุกลามกลายเป็นมะเร็งได้ในที่สุดการเหนี่ยวนำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงของเซลล์ตับในหนูทดลอง โดยการกระตุ้นให้เกิดความไม่สมดุลกันระหว่างการสร้างไขมันและการดูดกลับของกรดไขมันอิสระในร่างกายส่งผลให้ไขมันมาพอกสะสมที่เซลล์ตับเกิดเป็นภาวะไขมันพอกตับที่มีพยาธิสภาพและจุลพยาธิวิทยาที่ใกล้เคียงกับในมนุษย์ รูปแบบการเหนี่ยวนำภาวะไขมันพอกตับมี 2 ลักษณะใหญ่ คือ การดัดแปลงพันธุกรรม ได้แก่ หนูไมซ์ทรานสจีนิก SREBP-1c หนูไมซ์ ob/obหนูไมซ์ db/dbหนูไมซ์ KK-Ay หนูไมซ์ PTEN10 และ หนูไมซ์น็อคเอาท์ PPAR-αเป็นต้น เป็นหนูไมซ์ที่ถูกปรับแต่งหรือไม่มียีนที่เกี่ยวข้องกับการสร้างหรือผลิตไขมันและ/หรือวิถีที่เกี่ยวข้อง ส่วนอีกลักษณะหนึ่งเป็นการเหนี่ยวนำด้วยอาหารประเภทต่างๆ ได้แก่ อาหารที่ขาดเมไทโอนีนและโคลีน อาหารไขมันสูง คลอเรสเตอรอลร่วมกับชอคโกแลต หรือน้ำตาลฟรุกโตส เป็นต้น การเหนี่ยวนำภาวะไขมันพอกตับแต่ละรูปแบบให้พัฒนาการของพยาธิสภาพของโรคได้แตกต่างกันและใช้ระยะเวลาที่แตกต่างกัน ดังนั้น การพิจารณารูปแบบการเหนี่ยวนำให้ได้ภาวะไขมันพอกตับที่สอดคล้องกับวัตถุประสงค์ของการวิจัย จึงเป็นปัจจัยหลักที่ส่งผลต่อความถูกต้องแม่นยำและประสิทธิผลของการวิจัย


 

Article Details

ประเภทบทความ
บทความปริทัศน์ (Review Article)

เอกสารอ้างอิง

Abiru S, Migita K, Maeda Y, et al. Serum cytokine and soluble cytokine receptor levels in patients with non-alcoholic steatohepatitis. Liver Int 2006; 26: 39–45.

Ackerman Z, Oron-Herman M, Grozovski M, et al. Fructose-induced fatty liver disease: hepatic effects of blood pressure and plasma trigly ceride reduction. Hypertension 2005; 45(5): 1012-1018.

Angulo P. Nonalcoholic fatty liver disease. N Engl J Med 2002; 346(16): 1221-1231.

Angulo P, Keach JC, Batts KP, Lindor KD. Indepen dent predictors of liver fibrosis in patients with nonalcoholic steatohepatitis. Hepatology 1999; 30(6): 1356-1362.

Armutcu F, Coskun O, Gürel A, et al. Thymosin alpha 1 attenuates lipid peroxidation and improves fructose-induced steatohepatitis in rats. Clin Biochem 2005; 38(6): 540-554.

Anstee QM, Goldin RD. Mouse models in non-alco holic fatty liver disease and steatohepatitis research. Int J Exp Pathol 2006; 87(1): 1-16.

Bray GA, York DA. Hypothalamic and genetic obesity in experimental animals: an autonomic and endocrine hypothesis. Physiol Rev 1979; 59(3): 719-809.

Caldwell SH, Swerdlow RH, Khan EM, et al. Mito¬chondrial abnormalities in non-alcoholic st¬eatohepatitis. J Hepatol 1999; 31: 430-434.

Chavin KD, Yang SQ, Lin HZ, et al. Obesity induces expression of uncoupling protein-2 in hepa¬tocytes and promotes liver ATP depletion. J Biol Chem 1999; 274(9): 5692-5700.

Chen H, Charlat O, Tartaglia LA, et al. Evidence that the diabetes gene encodes the leptin receptor: identification of a mutation in the leptin receptor gene in db/db mice. Cell 1996; 84(3): 491-495.

Debaere C, Rigauts H, Laukens P. Transient focal fatty liver infiltration mimicking liver metas¬tasis. J Belge Radiol 1998; 81(4): 174-175.

Deng QG, She H, Cheng JH, et al. Steatohepatitis induced by intragastric overfeeding in mice. Hepatology 2005; 42(4): 905-914.

Dixon JB, Bhathal PS, O’Brien PE. Nonalcoholic Fatty Liver Disease: Predictors of Nonal¬coholic Steatohepatitis and Liver Fibrosis in the Severely Obese. Gastroenterology 2001; 121(1): 91–100.

Fan CY, Pan J, Usuda N, Yeldandi AV, Rao MS, Reddy JK. Steatohepatitis spontaneous peroxisome proliferation and liver tumors in mice lacking peroxisomal fatty acyl-CoA oxidase: implications for peroxisome prolife rator-activated receptor alpha natural ligand metabolism. J Biol Chem 1998; 273(25): 15639-15645.

Giugllono D, Paolisso G, Cerillo A. Oxidative stress and diabetes vascular complication. Diabetes Care 1996; 19(3): 257-267.

Grattagliano I, Caraceni P, Calamita G, et al. Severe liver steatosis correlates with nitrosative and oxidative stress in rats. Eur J Clin Invest. 2008; 38(7): 523–530.

Hashinaga T, Wada N, Yamada K, et al. Transgenic mice expressing nuclear sterol regulatory element-binding protein 1c in adipose tissue exhibit liver histology similar to nonalcoholic steatohepatitis. Metabolism 2007; 56(4): 470-475.

Horie Y, Suzuki A, Kataoka E, et al. Hepatocyte specific Pten deficiency results in steato¬hepatitis and hepatocellular carcinomas. J Clin Invest 2004; 113(12): 1774-1783.

Hug H, Strand S, Grambihler A et al. Reactive oxygen intermediates are involved in the induction of CD95 ligand mRNA expression by cytostatic drugs in hepatoma cells. J Biol Chem 1997; 72(45): 272-281.

Inayat-Hussain SH, Couet C, Cohen GM, Cain K. Processing/activation of CPP32-like proteases is involved in transforming growth factor beta1-induced apoptosis in rat hepatocytes. Hepatology 1997; 25(6): 1516-1526.