การเฝ้าระวังเชื้อ Burkholderia pseudomallei ในสัตว์จากโรงฆ่าสัตว์ในจังหวัดนครปฐมและราชบุรี
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์ เพื่อศึกษาเชื้อ Burkholderia pseudomallei จากสัตว์ที่เข้าฆ่าในโรงฆ่าสัตว์ ข้อมูลนี้เป็นประโยชน์ให้ผู้เกี่ยวข้องใช้สำหรับการจัดการด้านความปลอดภัยทางชีวภาพในโรงฆ่าสัตว์
วัสดุ อุปกรณ์ และวิธีการ เก็บตัวอย่างอวัยวะและเนื้อเยื่อแบบเจาะจงเฉพาะที่มีรอยโรคจากสัตว์ที่เข้าฆ่าในโรงฆ่าสัตว์ในจังหวัดนครปฐมและราชบุรี ระหว่างเดือนพฤศจิกายน 2559 ถึงเมษายน 2560 จำนวน 400 ตัวอย่าง เพาะเชื้อและจำแนกชนิดเชื้อ ทดสอบความไวเชื้อต่อยาต้านจุลชีพด้วยวิธี broth microdilution และตรวจสอบรูปแบบพันธุกรรมของเชื้อโดยวิธี pulsed field gel electrophoresis (PFGE)
ผลการศึกษา ผลการเพาะเชื้อโดยรวมพบ B. pseudomallei 23.3% (93/400) ตัวอย่างอวัยวะและเนื้อเยื่อที่เก็บจากซากสุกรในโรงฆ่าสัตว์ในจังหวัดนครปฐมพบเชื้อ 26.0% (52/200) ส่วนตัวอย่างที่เก็บจากโรงฆ่าสัตว์ในจังหวัดราชบุรีพบเชื้อจากอวัยวะและเนื้อเยื่อจากซากสุกร 20.8% (40/192) และซากแพะ 100% (1/1) แต่ไม่พบ B. pseudomallei จากซากโคเนื้อ (0/7) ลักษณะรอยโรคที่พบเชื้อจำแนกเป็นแบบฝีหนอง 40.7% (81/199) เยื่อหุ้มอวัยวะอักเสบ 7.4% (9/121) มีเลือดคั่ง 4.2% (1/24) เป็นหย่อมสีขาว 2/7% (1/37) และมดลูกอักเสบแบบมีหนอง 100% (1/1) ผลเพาะเชื้อจากตัวอย่างที่มีรอยโรคแบบฝีหนองพบ B. pseudomallei จากตับ 40.4% (36/89) ปอด 23.8% (10/42) ม้าม 53.2% (33/62) และต่อมน้ำเหลือง 66.7% (2/3) การทดสอบความไวเชื้อต่อยาต้านจุลชีพพบว่าเชื้อมีความไวสูงสุด 100% (89/89) ต่อยา ceftazidime และ imipenem รองลงมาคือ amoxicillin-clavulanic acid 98.9% (88/89), doxycycline 92.1% (82/89) และ tetracycline 91.0% (81/89) ส่วนยา trimethoprim-sulfamethoxazole มีประสิทธิผลต่อเชื้อเพียง 34.8% (31/89) ผลการตรวจสอบรูปแบบพันธุกรรมพบเชื้อมีลายพิมพ์ดีเอ็นเอแตกต่างกัน 46 รูปแบบ เชื้อซึ่งแยกได้จากตัวอย่างที่เก็บจากโรงฆ่าสัตว์ในจังหวัดนครปฐมพบ 31 รูปแบบ และจากจังหวัดราชบุรีพบ 17 รูปแบบ
ข้อสรุป ผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่ามีสัตว์ติดเชื้อ B. pseudomallei รวมอยู่ในกลุ่มสัตว์สุขภาพดีที่เข้าฆ่าในโรงฆ่าสัตว์ อวัยวะที่พบการติดเชื้อได้บ่อยคือม้าม ตับ และปอด ซึ่งส่วนใหญ่พบเชื้อจากรอยโรคแบบฝีหนอง โดยเชื้อที่พบมีความหลากหลายทางพันธุกรรมสูง ดังนั้นผู้เกี่ยวข้องต้องมีแนวทางปฏิบัติที่ดีเพื่อให้เกิดความปลอดภัยทางชีวภาพ
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Carter, G.R., Cole, J.R.Jr., 1990. Diagnostic procedures in veterinary bacteriology and mycology. 4th edition, Academic Press, Inc. San Diego, California.
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI)., 2016. Method for antimicrobial dilution and disk susceptibility testing of infrequently isolated or fastidious bacteria. 3rd edition, CLSI guideline M45. CLSI, Wayne, Pennsylvania.
Department of Livestock Development (DLD). 2017. Annual report 2017. Veterinary Research and Development Center (western region), p 30.
Godoy, D., Randle, G., Simpson, A.J., Aanensen, D.M., Pitt, T.L., Kinoshita, R., Spratt, B.G., 2003. Multilocus sequence typing and evolutionary relationships among the causative agents of melioidosis and glanders, Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei. Journal of Clinical Microbiology 41 (5), 2068-2079.
Harris, P.N.A., Ketheesan, N., Owens, L., Norton, R.E., 2009. Clinical features that affect indirect-hemagglutination-assay responses to Burkholderia pseudomallei. Clinical and Vaccine Immunology 16 (6), 924-930.
Hassan, M.R.A., Vijayalakshmi, N., Pani, S.P., Peng, N.P., Mehenderkar, R., Voralu, K., Michael, E., 2014. Antimicrobial susceptibility pattern of Burkholderia pseudomallei among melioidosis case in Kedah, Malaysia. Southeast Asian Journal of Tropical Medicine Public Health 45 (3), 680-688.
Julagiwansujarit, J., Naksuwan, R., Sakdinun, P., 2014. Epidemiology and genetic diversity of Burkholderia pseudomallei strains isolated from goats deer pigs and soil in Ratchaburi province by Pulsed Field Gel Electrophoresis. Thai-NIAH eJournal, https://niah.dld.go.th/ niah 8 (3), 113-129.
Kongkaew, W., Thiptara, A., Kaewkalong, S., Hinjoy, S., 2017. Situation of melioidosis in Thailand, 2006-2015. Thai-NIAH eJournal, https://niah.dld.go.th/niah 12 (1), 80-102.
Limmathurotsakul, D., Wongsuvan, G., Ngamwilai, S., Saiprom, N., Rongkard, P. Thaipadungpanit, J., Chantratits, N., Day, N.P.J., Peacock, S.J., 2014. Melioidosis caused by Burkholderia pseudomallei in drinking water, Thailand, 2012. Emerging Infectious Diseases 20 (2), 265-268.
Manivanh, L., Pierret, A., Rattanavong, S., Kounnavongsa, O., Buisson, Y., Elliott, I., Maeght, J.L., Xayyathip, K., Silisouk, J., Vongsouvath, M., Phetsouvanh, R., Newton, P.N., Lacombe, G., Ribolzi, O., Rochelle-Newall, E., Dance, D.A.B., 2017. Burkholderia pseudomallei in a lowland rice paddy: seasonal changes and influence of soil depth and physico-chemical properties. Scientific Report 7, 3031. doi: 10.1038/s41598-017-02946-z.
Rolim, D.B., Rocha, M.F.G., Brilhante, R.S.N., Cordeiro, R.A., Leitao-Junior, N.P., Inglis, T.J.J., Sidrim, J.J.C., 2009. Environmental isolates of Burkholderia pseudomallei in Ceara state, northeastern Brazil. Applied Environment Microbiology 75 (4), 1215-1218.
Sakdinun, P., Paethaisong, T., Antarasena, C., 2012. Epidemiological study of Burkholderia pseudomallei isolates form animals and soil in an endemic area of Ratchaburi province by pulsed-field gel electrophoresis. Proceedings of Thailand-Japan joint conference on animal health 2012. The 25th year anniversary of National Institute of Animal Health; May 30-31, 2012. Rama Gardens hotel, Bangkok, Thailand, 117-123.
Thong, K.L., Cheong, Y.M., Puthucheary, S., Koh, C.L., Pang, T., 1994. Epidemiologic analysis of sporadic Salmonella Typhi isolates and those from outbreaks by pulsed-field gel electrophoresis. Journal of Clinical Microbiology 32 (5), 1135-1141.
Vongphayloth, K., Rattanavong, S., Moore, C.E., Phetsouvanh, R., Wuthiekanun, A., Phouminh, V., Sengdouangphachanh, P., Newton, P.N., Buisson, Y., 2012. Burkholderia pseudomallei detection in surface water in southern Laos using Moore’s swabs. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 86 (5), 872-877.
