เชื้อรา Scedosporium species complex: ภัยเงียบที่ถูกละเลย
คำสำคัญ:
เชื้อราซีโดสปอเรียม, เชื้อราโลเมนโตสปอรา, โรคติดเชื้อราซีโดสปอเรียม, โรคติดเชื้อราโลเมนโตสปอรา, สำลักน้ำบทคัดย่อ
Scedosporiosis และ Lomentosporiosis เป็นโรคติดเชื้อราที่เกิดจากเชื้อราในกลุ่ม Scedosporium spp. และ Lomentospora prolificans โดยพบว่ามีรายงานการดื้อยาต้านเชื้อราหลายชนิด ในอัตราไม่ต่ำกว่าร้อยละ 85 แต่กลับพบว่าในประเทศไทยยังมีรายงานผู้ป่วยไม่มาก ซึ่งตรงข้ามกับรายงานที่มีทั่วโลก ทั้งนี้อาจเกิดจากความคลาดเคลื่อนในการวินิจฉัย เนื่องจากเชื้อราชนิดนี้มีความคล้ายคลึงกับเชื้อรากลุ่ม Aspergillus spp. ทั้งในลักษณะทางพยาธิวิทยาและอาการทางคลินิก ถึงแม้ผู้ติดเชื้อราชนิดนี้จะพบได้น้อย แต่กลับมีอัตราการเสียชีวิตสูงกว่าร้อยละ 75 ผู้ป่วยที่มีภูมิคุ้มกันบกพร่อง เช่น ผู้ป่วยมะเร็ง ผู้ที่ได้รับการปลูกถ่ายอวัยวะ หรือผู้ป่วยเอดส์ เป็นกลุ่มเสี่ยงสูงสุดที่จะติดเชื้อ นอกจากนี้ยังพบในผู้ป่วยที่มีภูมิคุ้มกันปกติแต่มีประวัติสำลักน้ำสกปรกหรือบาดเจ็บจากวัตถุมีคม ยิ่งไปกว่านั้นเชื้อราดังกล่าวมักพบในพื้นที่ชุมชนเมืองที่มีสิ่งแวดล้อมแออัด มากกว่าพื้นที่ชนบทหรือป่า ทำให้เชื้อรานี้มีความใกล้ชิดกับวิถีชีวิตของมนุษย์มากขึ้น สำหรับประเทศไทยบุคลากรทางการแพทย์และวิทยาศาสตร์การแพทย์ยังมีความคุ้นเคยหรือมีประสบการณ์ต่อเชื้อราทั้งสองชนิดน้อยมาก โดยเริ่มมีความตระหนักถึงความสำคัญภายหลังปี ค.ศ. 2007 สืบเนื่องจากมีรายงานผู้เสียชีวิตจากเชื้อราชนิดนี้ ในปัจจุบันองค์การอนามัยโลก (WHO) ได้จัดเชื้อราในกลุ่มนี้อยู่ในระดับ medium group ของ WHO Fungal Priority Pathogen List (FPPL) ตั้งแต่ปี ค.ศ. 2022 นั่นแสดงให้เห็นว่า Scedosporium spp. และ Lomentospora spp. มีความสำคัญทางระบบสาธารณสุขที่ควรให้ความสนใจและพัฒนางานวิจัยที่เกี่ยวข้องเพิ่มมากขึ้น บทความนี้มุ่งเน้นให้ข้อมูลพื้นฐานเกี่ยวกับเชื้อราก่อโรคในคน การรายงานผู้ป่วยและการปนเปื้อนในประเทศไทยที่มีรายงานในอดีต ตลอดจนลักษณะทางคลินิก การวินิจฉัยจากห้องปฏิบัติการ รวมถึงยาต้านเชื้อราที่มีการใช้และพัฒนาในปัจจุบัน เพื่อนำไปสู่การพัฒนางานวิจัยที่เกี่ยวข้องในอนาคต
เอกสารอ้างอิง
Neoh CF, Chen SC, Lanternier F, et al. Scedosporiosis and lomentosporiosis: modern perspectives on these difficultto-treat rare mold infections. Clin Microbiol Rev 202413;37:e0000423. doi:10.1128/cmr.00004-23.
World Health Organization. WHO fungal priority pathogens list to guide research, development and public health action. World Health Organization [Internet] 2022 [cite 2024 Aug 9];1-48. Available from: https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/363682/9789240060241-eng.pdf?sequence=1.
Lackner M, de Hoog GS, Yang L, et al. Proposed nomenclature forPseudallescheria, Scedosporium and related genera. Fungal diversity [Internet] 2014 [cite 2024 Aug 1]. Available from: https://doi.org/10.1007/s13225-014-0295-4.
Castellani A. and Chalmers AJ. Manual of Tropical Medicine. Williams, Wood and Co., New York [Internet] 1919 [cite 2024 Aug 9]. Available from: https://doi.org/10.5962/bhl.title.84653.
Hawksworth DL, Crous PW, Redhead SA, et al. The amsterdam declaration on fungal nomenclature. IMA Fungus 2011;2:105-12. doi:10.5598/imafungus.2011.02.01.14.
Thornton CR. Detection of the ‘Big Five’ mold killers of humans: Aspergillus, Fusarium, Lomentospora, Scedosporium and Mucormycetes. Adv Appl Microbiol 2020;110:1-61. doi:10.1016/bs.aambs.2019.10.003.
Rougeron A, Giraud S, Alastruey-Izquierdo A, et al. Ecology of Scedosporium Species: Present knowledge and future research. Mycopathologia 2018;183:185-200. doi:10.1007/s11046-017-0200-2.
Luplertlop N, Muangkaew W, Pumeesat P, et al. Distribution of Scedosporium species in soil from areas with high human population density and tourist popularity in six geographic regions in Thailand. PLoS One 2019;14:e0210942. doi:10.1371/journal.pone.0210942.
Wongsuk T, Pumeesat P, Luplertlop N. Genetic variation analysis and relationships among environmental strains ofScedosporium apiospermum sensu stricto in Bangkok, Thailand. PLoS One 2017;12:e0181083. doi:10.1371/journal.pone.0181083.
Luplertlop N, Pumeesat P, Muangkaew W, et al. Environmental Screening for the Scedosporium apiospermum Species Complex in Public Parks in Bangkok, Thailand. PLoS One 2016;11:e0159869. doi:10.1371/journal.pone.0159869.
Salkin IF, McGinnis MR, Dykstra MJ, et al. Scedosporium inflatum, an emerging pathogen. J Clin Microbiol 1988;26:498-503. doi:10.1128/jcm.26.3.498-503.1988.
Ramirez-Garcia A, Pellon A, Rementeria A, et al. Scedosporium and Lomentospora: An updated overview of underrated opportunists. Med Mycol 2018;56:102-25. doi:10.1093/mmy/myx113.
Pitisuttithum P, Negroni R, Graybill JR, et al. Activity of posaconazole in the treatment of central nervous system fungal infections. J Antimicrob Chemother 2005;56:745-55. doi:10.1093/jac/dki288.
Leechawengwongs M, Milindankura S, Liengudom A, et al. MultipleScedosporium apiospermum brain abscesses after neardrowning successfully treated with surgery and long-term voriconazole: A case report. Mycoses 2007;50:512-6. doi:10.1111/j.1439-0507.2007.01410.x.
Satirapoj B, Ruangkanchanasetr P, Treewatchareekorn S, et al.Pseudallescheria boydii brain abscess in a renal transplant recipient: First case report in Southeast Asia. Transplant Proc 2008;40:2425-7. doi:10.1016/j.transproceed.2008.07.030.
Ruangkanchanasetr P, Lauhawatana B, Leawseng S, et al. Malignancy in renal transplant recipients: A single-center experience in Thailand. J Med Assoc Thai 2012;95:S12-6.
Larbcharoensub N, Chongtrakool P, Wirojtananugoon C, et al. Treatment of a brain abscess caused by Scedosporium apiospermum and Phaeoacremonium parasiticum in a renal transplant recipient. Southeast Asian J Trop Med Public Health 2013;44(3):484-9.
Joob B, Wiwanitkit V. CNS Pseudallescheria boydii infection. Acta Neurol Belg 2015;115:747. doi:10.1007/s13760-015-0429-9.
Wangchinda W, Chongtrakool P, Tanboon J, et al. Lomentospora prolificans vertebral osteomyelitis with spinal epidural abscess in an immunocompetent woman: Case report and literature review. Med Mycol Case Rep 2018;21:26-9. doi:10.1016/j.mmcr.2018.03.008.
Prasoppokakorn T. AcupunctureAssociated Mycobacterium massiliense a n d S c e d o s p o r i u m I n f e c t i o n s superimposed by tetanus. Case Rep Infect Dis 2022;2022:8918020. doi:10.1155/ 2022/8918020.
Jiang Y, Gohara AF, Mrak RE, et al. Misidentification of Scedosporium boydii Infection as Aspergillosis in a patient with chronic renal failure. Case Rep Infect Dis 2020;2020:9727513. doi:10.1155/2020/9727513.
Ledoux MP, Dicop E, Sabou M, et al. Fusarium, Scedosporium and other rare mold invasive infections: Over twentyfive-year experience of a European tertiary-care center. J Fungi (Basel) 2024;10:289. doi:10.3390/jof10040289.
Kim CM, Lim SC, Kim J, et al. Tenosynovitis caused by Scedosporium apiospermum infection misdiagnosed as an Alternaria species: A case report. BMC Infect Dis 2017;17:72. doi:10.1186/s12879-016-2098-6.
Preedanon S, Suetrong S, Srihom C, et al. Eight novel cave fungi in Thailand’s Satun Geopark. Fungal Syst Evol 2023;12:1-30. doi:10.3114/fuse.2023.12.01.
Kitisin T, Muangkaew W, Ampawong S, et al. Isolation of fungal communities and identification of Scedosporium species complex with pathogenic potentials from a pigsty in Phra Nakhon Si Ayutthaya, Thailand. New Microbiol 2021;44:33-41.
Pham T, Giraud S, Schuliar G, et al. ScedoSelect III: A new semi-selective culture medium for detection of theScedosporium apiospermum species complex. Med Mycol 2015;53:512-9. doi:10.1093/mmy/myv015.
Chen SC, Halliday CL, Hoenigl M, et al. Scedosporium and Lomentospora infections: Contemporary microbiological tools for the diagnosis of invasive disease. J Fungi (Basel) 2021;7:23. doi:10.3390/jof7010023.
Gillum PS, Gurswami A, Taira JW. Localized cutaneous infection by Scedosporium prolificans (inflatum). Int J Dermatol 1997; 36:297-9. doi:10.1111/j.1365-4362.1997.tb03051.x.
Yadav KK, Nimonkar Y, Green SJ, et al. Anaerobic growth and drug susceptibility of versatile fungal pathogenScedosporium apiospermum. iScience 2023;26:108304. doi:10.1016/j.isci.2023.108304.
Muangkaew W, Wongsuk T, Pumeesat P, et al. The influence of culture media on growth and morphology of Scedosporium boydii and Scedosporium prolificans. J Med Health Sci 2016;23:16-25.
Kimura M, Maenishi O, Ito H, et al. Unique histological characteristics ofScedosporium that could aid in its identification. Pathol Int 2010;60:131-6. doi:10.1111/j.1440-1827.2009.02491.x.
Ampawong S, Luplertlop N. Experimental scedosporiosis Induces cerebral oedema associated with abscess regarding Aquaporin-4 and Nrf-2 depletions. Biomed Res Int 2019;2019:6076571. doi:10.1155/2019/6076571.
Lamoth F, Nucci M, Fernandez-Cruz A, et al. Performance of the beta-glucan test for the diagnosis of invasive fusariosis and scedosporiosis: A meta-analysis. Med Mycol 2023;61:myad061. doi:10.1093/mmy/myad061.
Harun A, Kan A, Schwabenbauer K, et al. Multilocus Sequence Typing reveals extensive genetic diversity of the emerging fungal pathogenScedosporium aurantiacum. Front Cell Infect Microbiol 2021;11:761596. doi:10.3389/fcimb.2021.761596.
Matray O, Mouhajir A, Giraud S, et al. Semi-automated repetitive sequencebased PCR amplification for species of the Scedosporium apiospermum complex. Med Mycol 2016;54:409-19. doi:10.1093/mmy/myv080.
Bernhardt A, Sedlacek L, Wagner S, et al. Multilocus sequence typing ofScedosporium apiospermum and Pseudallescheria boydii isolates from cystic fibrosis patients. J Cyst Fibros 2013;12:592-8. doi:10.1016/j.jcf.2013.05.007.
Yao Y, Xu Q, Liang W, et al. Multi-organ involvement caused by Scedosporium apiospermum infection after near drowning: A case report and literature review. BMC Neurol 2024;24:124. doi:10.1186/s12883-024-03637-9.
Dong M, Pearce F, Singh N, et al. A case o f L o m e n t o s p o r a p r o l i fi c a n s endophthalmitis treated with the novel antifungal agent Olorofim. J Ophthalmic Inflamm Infect 2024;14:13. doi:10.1186/s12348-024-00393-2.
Rollin-Pinheiro R, Xisto MIDDS, de CastroAlmeida Y, et al. Pandemic Response Box® library as a source of antifungal drugs against Scedosporium and Lomentospora species. PLoS One 2023;18:e0280964. doi:10.1371/journal.pone.0280964.
Lima SL, Colombo AL, de Almeida Junior JN. Fungal cell wall: Emerging antifungals and drug resistance. Front Microbiol 2019;10:2573. doi:10.3389/fmicb.2019.02573.
Rollin-Pinheiro R, Almeida YC, Rochetti VP, et al. Miltefosine Against Scedosporium and Lomentospora Species: Antifungal activity and its effects on fungal Cells. Front Cell Infect Microbiol 2021;11:698662. doi:10.3389/fcimb.2021.698662.
Wang Z, Liu M, Liu L, et al. The Synergistic Effect of Tacrolimus (FK506) or Everolimus and Azoles against Scedosporium and Lomentospora Species In Vivo and In Vitro. Front Cell Infect Microbiol 2022;12:864912. doi:10.3389/fcimb.2022.864912.
Galgóczy L, Lukács G, Nyilasi I, et al. Antifungal activity of statins and their interaction with amphotericin B against clinically important Zygomycetes. Acta Biol Hung 2010;61:356-65. doi:10.1556/ABiol.61.2010.3.11.
Pumeesat P, Wongsuk T, Muangkaew W, et al. Growth-inhibitory effects of farnesol against Scedosporium boydii and Lomentospora prolificans. Southeast Asian J Trop Med Public Health 2017;48:170-8.
Kitisin T, Muangkaew W, Ampawong S, et al. Development and efficacy of tryptophol-containing emulgel for reducing subcutaneous fungal nodules from Scedosporium apiospermum eumycetoma. Res Pharm Sci 2022;17:707-22. doi:10.4103/1735-5362.359437.
Kitisin T, Muangkaew W, Ampawong S, et al. Tryptophol coating reduces catheterrelated cerebral and pulmonary infections by Scedosporium apiospermum. Infect Drug Resist 2020;13:2495-508. doi:10.2147/IDR.S255489.
Davis SR, Perrie R, Apitz-Castro R. The in vitro susceptibility of Scedosporium prolificans to ajoene, allitridium and a raw extract of garlic (Allium sativum). J Antimicrob Chemother 2003;51:593-7. doi:10.1093/jac/dkg144.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2024 วารสารการแพทย์และวิทยาศาสตร์สุขภาพ

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.