แบคทีเรียและเชื้อราก่อโรคที่ปะปนในมูลค้างคาวอาศัยในถ้ำ จังหวัดกาญจนบุรี

ผู้แต่ง

  • วัชรมาศ ม่วงแก้ว ภาควิชาจุลชีววิทยาและอิมมิวโนโลยี คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • ฐิตารีย์ ดวงดัน สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • จันทิมา เอี่ยมพรชัย สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • รัตน์ติภรณ์ ทิพประเสริฐ สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • ริศา เคนพันธ์ สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • สุภัทร ประสพศิลป์ งานปฏิบัติการวิทยาศาสตร์เพื่อการศึกษา มหาวิทยาลัยมหิดล วิทยาเขตกาญจนบุรี
  • ยุทธนา สามัง ภาควิชากีฏวิทยาการแพทย์ คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • ปัญญวัฒน์ บุญถนอม งานเทคโนโลยีและศิลปกรรม สำนักงานคณบดี คณะเวชศาสตร์เขตร้อน มหาวิทยาลัยมหิดล
  • ณัฐภาณินี ถนอมศรีเดชชัย สาขาวิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา

คำสำคัญ:

มูลค้างคาว, มัลดิทอฟแมสสเปคโตรเมทรี, แบคทีเรีย, เชื้อรา, ถ้ำ, จังหวัดกาญจนบุรี

บทคัดย่อ

ค้างคาวเป็นพาหะของเชื้อจุลชีพหลายชนิด โดยมีมูลค้างคาวเป็นแหล่งสะสมของเชื้อชนิดต่างๆ ที่สามารถแพร่กระจายสู่สิ่งแวดล้อมและนำไปสู่การก่อโรคติดเชื้อโรคในมนุษย์ได้ การศึกษาครั้งนี้จึงมีวัตถุประสงค์ที่จะศึกษาแบคทีเรียและเชื้อราที่ปะปนในมูลค้างคาว ซึ่งตัวอย่างมูลค้างคาวนั้นทำการเก็บจากพื้นที่ถ้ำที่มีการจำกัดการเข้าถึง จากนั้นทำการเจือจางด้วยวิธีเจือจางตัวอย่างลงครั้งละ 10 เท่า (10-fold dilutions) ลงในอาหารเลี้ยงเชื้อในเบื้องต้นผู้วิจัยมุ่งเน้นศึกษาเชื้อราที่พบในมูลค้างคาวจึงเลือกใช้อาหารเลี้ยงเชื้อ Sabouraud Dextrose Agar ที่ใส่ยาคลอแรมเฟนิคอล (Chloramphenicol) บ่มที่ 37 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 48-72 ชั่วโมง คัดเลือกโคโลนีและเพาะเลี้ยงเชื้อให้ได้โคโลนีบริสุทธิ์ นำไปวิเคราะห์ด้วยเครื่อง MALDI-TOF MS จากการศึกษาไม่พบการเจริญของเชื้อในค่าการเจือจางที่ 10-4 ถึง 10-7 แต่พบการเจริญของเชื้อในค่าการเจือจางที่ 10-1, 10-2 และ 10-3 เท่า นอกจากนี้ ได้ทำการเพิ่มความหลากหลายของอาหารเลี้ยงเชื้อ ได้แก่ Sabouraud Dextrose Agar, Potato dextrose agar และ Malt extract agar ซึ่งผสมยาคลอแรมเฟนิคอล และเพิ่มสภาวะการบ่มที่ 25 และ 37 องศาเซลเซียส ผลการศึกษาพบว่าจากโคโลนีที่ทำการคัดเลือกหลังการเพาะเลี้ยง มีทั้งหมด 28 ไอโซเลท แบ่งได้เป็น เชื้อแบคทีเรียและเชื้อรา ผลการวิเคราะห์ด้วยเครื่อง MALDI-TOF MS ระบุเชื้อได้เพียง 9 ไอโซเลท กลุ่มแบคทีเรีย 8 เชื้อ ได้แก่ Providencia stuartii, Bacillus subtilis, Bacillus amyloliquefaciens, Alcaligenes faecalis, Proteus mirabilis, Ochrobactrum intermedium, Achromobacter xylosoxidans และ Stenotrophomonas maltophilia และกลุ่มราพบ 1 เชื้อ คือ Aspergillus versicolor ส่วนโคโลนีที่ไม่สามารถ ระบุชนิดได้จากการวิเคราะห์ด้วยเครื่อง MALDI-TOF MS ได้คัดเลือกไปทำการวิเคราะห์ด้วยวิธี DNA sequencing และได้ผลเพิ่มเติมเป็นเชื้อ Cladosporium perangustum ซึ่งเป็นเชื้อราสาย จากการศึกษาครั้งนี้พบว่าเชื้อจุลชีพส่วนใหญ่ที่พบเป็นเชื้อแบคทีเรียที่พบในธรรมชาติ และบางเชื้อพบมีรายงานก่อโรคติดเชื้อฉวยโอกาสในมนุษย์ ผลจากงานวิจัยนี้สามารถนำไปต่อยอด และนำข้อมูลที่ได้ไปสู่การเฝ้าระวังหรือใช้เตือนภัยสำหรับผู้ที่มีความเสี่ยงในการสัมผัสมูลค้างคาวได้

เอกสารอ้างอิง

Rapin N, Johns K, Martin L, et al. Activation of innate immune-response genes in little brown bats (Myotis Lucifugus) infected with the fungus pseudogymnoascus destructans. PLoS One 2014;9.

Jones G, Jacobs DS, Kunz TH, et al. Carpe noctem: The importance of bats as bioindicators. Endang Species Res 2009;8:93-115.

Ferreira RL. Guano communities. In: White WB, editor. Encyclopedia of caves. 3rd ed. Cambridge (US): Academic Press; 2019. p. 474-84.

Dietrich M, Markotter W. Studying the microbiota of bats: accuracy of direct and indirect samplings. Ecol Evol 2019;9:1730-5.

Rodhain E. Chauves-souris et virus: des relations complexes. Bull la Soc Pathol Exot 2015;doi:10.1007/S13149-015-0448-z.

Banskar S, Bhute SS, Suryavanshi MV., et al. Microbiome analysis reveals the abundance of bacterial pathogens in Rousettus leschenaultii guano. Sci Rep 2016;6:36948. doi:10.1038/srep36948.

Norkaew T, Ohno H, Sriburee P, et al. Detection of environmental sources of Histoplasma capsulatum in Chiang Mai, Thailand, by Nested PCR. Mycopathologia. 2013;176:395-402. doi:10.1007/s11046-013-9701-9.

Dimkić I, Stanković S, Kabić J, et al. Bat guano-dwelling microbes and antimicrobial properties of the pygidial gland secretion of a troglophilic ground beetle against them. Appl Microbiol Biotechnol 2020;104:4109-26.

Cordero RJB, Liedke SC, Araújo GRDS, et al. Enhanced virulence of Histoplasma capsulatum through transfer and surface incorporation of glycans fromCryptococcus neoformans during co-infection. Sci Rep 2016;6:21765. doi:10.1038/srep21765.

Oltean HN, Springer M, Bowers JR, et al. Suspected locally acquired coccidioidomycosis in human, Spokane, Washington, USA. Emerg Infect Dis 2020;26:606-9.

Sugita T, Kikuchi K, Makimura K, et al. Trichosporon species isolated from guano samples obtained from bat-inhabited caves in Japan. Appl Environ Microbiol 2005;71:7626-9.

Nualmalang R, Thanomsridetchai N, Teethaisong Y, et al. (2023). Identification of pathogenic and opportunistic yeasts in pigeon excreta by MALDI-TOF mass spectrometry and their prevalence in Chon Buri Province, Thailand. Int J Environ Res Public Health 2023;20:3191. doi:10.3390/ijerph20043191.

De Leon MP, Montecillo AD, Pinili DS, et al. Bacterial diversity of bat guano from cabalyorisa cave, mabini, pangasinan, philippines: A first report on the metagenome of philippine bat guano. PLoS One 2018;13:e0200095. doi:10.1371/journal.pone.0200095.

Wolkers-Rooijackers JCM, Rebmann K, Bosch T, et al. Fecal bacterial communities in insectivorous bats from the Netherlands and their role as a possible vector for foodborne diseases. Acta Chiropterologica 2018;20:475-83.

Brooke JS. 2021. Advances in the Microbiology of Stenotrophomonas maltophilia. Clin Microbiol Rev 34:10.1128/cmr.00030-19. doi:10.1128/cmr.00030-19.

Hafiz TA, Aldawood E, Albloshi A, et al. Stenotrophomonas maltophilia epidemiology, resistance characteristics, and clinical outcomes: Understanding of the recent three years’ trends. Microorganisms. 2022;10:2506. doi:10.3390/microorganisms10122506.

Kasimova AR, Gordina EM, Toropov SS, et al. Stenotrophomonas maltophilia infection in trauma and orthopedic patients: Clinical experience and review. Traumatol Orthop Russia 2023;29:84-94. doi:10.17816/2311-2905-2027.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2024-04-30

รูปแบบการอ้างอิง

1.
ม่วงแก้ว ว, ดวงดัน ฐ, เอี่ยมพรชัย จ, ทิพประเสริฐ ร, เคนพันธ์ ร, ตั้งวัฒนาชุลีพร ม, ประสพศิลป์ ส, สามัง ย, บุญถนอม ป, ถนอมศรีเดชชัย ณ. แบคทีเรียและเชื้อราก่อโรคที่ปะปนในมูลค้างคาวอาศัยในถ้ำ จังหวัดกาญจนบุรี. J Med Health Sci [อินเทอร์เน็ต]. 30 เมษายน 2024 [อ้างถึง 5 มกราคม 2026];31(1):32-44. available at: https://he01.tci-thaijo.org/index.php/jmhs/article/view/267770

ฉบับ

ประเภทบทความ

บทความวิจัย