The ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ปริมาณฟีนอลทั้งหมดและเคอวซิติน ของสารสกัดชั้นเอทานอลของดอกทองกวาว Butea monosperma (Linn.)

Main Article Content

นรินทร์ กากะทุม
แสงสิทธิ์ กฤษฎี
วรรณี พรมด้าว
กิตติศักดิ์ แคล้ว จันทร์สุข
ปภาวี สุขดี

บทคัดย่อ

การวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ สารประกอบฟีนอลิกทั้งหมด และปริมาณสารเควอซิตินในสารสกัดชั้นเอทานอลของดอกทองกวาว Butea monosperma (Linn.) โดยใช้เทคนิคโครมาโตกราฟีแบบของเหลวสมรรถนะสูง (High Performance Liquid Chromatography; HPLC) ผลการวิจัยพบว่าสารสกัดชั้นเอทานอลของดอกทองกวาวมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ โดยมีค่า IC50 เท่ากับ 49.43±3.4 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระน้อยกว่า BHT (สารมาตรฐาน) อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติที่ระดับ .05 ค่า p เท่ากับ 0.002 สารสกัดชั้นเอทานอลดอกทองกวาวมีปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด 86.01±0.03 มิลลิกรัมแกลลิกต่อน้ำหนักของสารสกัด และมีปริมาณเควอซิตินเท่ากับ 0.0110±0.0003 มิลลิกรัมต่อตัวอย่าง 100 มิลลิกรัม การศึกษานี้มีความสำคัญในการให้ข้อมูลเชิงปริมาณเกี่ยวกับฤทธิ์ทางชีวภาพของสารสกัดชั้นเอทานอลจากดอกทองกวาว ซึ่งสามารถนำไปใช้ในการพัฒนาผลิตภัณฑ์เพื่อสุขภาพ เครื่องสำอาง และเวชสำอางจากสมุนไพรในอนาคต การค้นพบนี้แสดงให้เห็นถึงศักยภาพของดอกทองกวาวเป็นแหล่งสารออกฤทธิ์ที่มีประโยชน์ทางเภสัชศาสตร์และบ่งชี้ว่าพืชชนิดนี้อาจถูกนำไปใช้ในการพัฒนาและสร้างสรรค์ผลิตภัณฑ์ใหม่ ๆ ที่สามารถตอบโจทย์ความต้องการในการดูแลสุขภาพอย่างยั่งยืน

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
1.
กากะทุม น, กฤษฎี แ, พรมด้าว ว, แคล้ว จันทร์สุข ก, สุขดี ป. The ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ปริมาณฟีนอลทั้งหมดและเคอวซิติน ของสารสกัดชั้นเอทานอลของดอกทองกวาว Butea monosperma (Linn.). JMPH4 [อินเทอร์เน็ต]. 11 ธันวาคม 2025 [อ้างถึง 13 มกราคม 2026];15(3):64-71. available at: https://he01.tci-thaijo.org/index.php/JMPH4/article/view/269407
ประเภทบทความ
นิพนธ์ต้นฉบับ (บทความวิชาการ)

เอกสารอ้างอิง

Forman HJ, Hongqiao Z. Targeting oxidative stress in disease: promise and limitations of antioxidant therapy. Nature Reviews Drug Discovery. 2021;20(9):689-709.

Zeb A. Concept, mechanism, and applications of phenolic antioxidants in foods. Journal of food biochemistry 2020;44(9):e13394.

Kumari P, Raina K, Thakur S, Sharma R, Cruz-Martins N, Kumar P, et al. Ethnobotany, phytochemistry and pharmacology of palash (Butea monosperma (Lam.) Taub.): a systematic review. Current Pharmacology Reports. 2022;8(3):188-204.

Krolikiewicz-Renimel I, Michel T, Destandau E, Reddy M, André P, Elfakir C, et al. Protective effect of a Butea monosperma (Lam.) Taub. Flowers extract against skin inflammation: antioxidant, anti-inflammatory and matrix metalloproteinases inhibitory activities. Journal of ethnopharmacology. 2013;148(2):537–43.

Tiwari P, Jena S, Sahu P.K. Butea monosperma: phytochemistry and pharmacology. Acta Scientific Pharmaceutical Science. 2019;3(4):19-26.

Kapse K, Goyal S. Phytochemical investigation and in-vitro antioxidant activity of butea monosperma leaves. Plant Archives 2020;20(2):4358-65.

Patel G, Pandey P, Tripathi IP, Singh R. Estimation of antidiabtic, antioxidant and phytochemical constituents of two species of butea monosperma (palash). Indian J Appl Res. 2019;9(11):57-9.

Jangid M, Chauhan PS, Neetha P, Chopra R, Nagar B, Kavita A, et al. Studies on Phytochemical Screening of Flowers and Chlorophyll Analysis of Butea Monosperma (Lam.) Kuntze, Jhalawar. Int J Curr Microbiol App Sci. 2021;10(1):3371-75.

Bala R, Mehta S, Roy VC, Roy RC, Roy S, Singh J. Evaluation of bioactive potentials in the crude flavonoid fraction from the leaves of Butea monosperma in vitro and in vivo in experimental models. Indian Journal of Experimental Biology. 2023;61(11):893-8.

Kaur V, Kumar M, Kumar A, Kaur S. Butea monosperma (Lam.) Taub. Bark fractions protect against free radicals and induce apoptosis in MCF-7 breast cancer cells via cell-cycle arrest and ROS-mediated pathway. Drug and chemical toxicology 2020;43(4):398-408.

Sudjaroen Y. Isolation and characterization of ellagitannins as the major polyphenolic components of Longan (Dimocarpus longan Lour) seeds. Phytochemistry 2012;77:226-37.

Manosroi A, Jantrawut P, Akihisa T, Manosroi W, Manosroi J. In vitro anti-aging activities of Terminalia chebula gall extract. Pharmaceutical Biology 2010; 48(4): 469–81.

Maliński MP, Kikowska MA, Soluch A, Kowalczyk M, Stochmal A, Thiem B. Phytochemical Screening, Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Biomass from Lychnis flos-cuculi L. In Vitro Cultures and Intact Plants. Plants. 2021;10(2):206.

Mehta JP, Pandya CV, Parmar PH, Vadia SH, Golakiya BA. Determination of flavonoids, phenolic acid and polyalcohol in Butea monosperma and Hedychium coronarium by semi-preparative HPLC Photo Diode Array (PDA) Detector. Arabian Journal of Chemistry. 2014; 7(6):1110-5.

Baessa M, Rodrigues MJ, Pereira C, Santos T, da Rosa Neng N, Nogueira JMF, Custódio L. A comparative study of the in vitro enzyme inhibitory and antioxidant activities of Butea monosperma (Lam.) Taub. and Sesbania grandiflora (L.) Poiret from Pakistan: New sources of natural products for public health problems. South African Journal of Botany. 2019;120:146-56.

Jain S, Dubey PK. Butea monosperma (Lam.) Taub: Review on its chemistry, morphology, ethnomedical uses, phytochemistry and pharmacological activities. Journal of Drug Delivery and Therapeutics. 2023;13(4):137-44.

Thida M, Chan KN, Ei SL, Khai A.A. In vitro antidiabetic activities of Myanmar medicinal plants: Cassia siamea Lam. and Butea monosperma Roxb. Indian Journal of Natural Products and Resources. 2023;13(4):483-90.