Study of the quality of leukodepleted pooled platelet concentrates (LDPPC) treated with pathogen inactivation: amotosalen - UVA light treatment through 7 days of storage

Authors

  • monlika lebkhurt ์National Blood Centre, Thai Red Cross Society
  • Narumon Worachun National Blood Centre, Thai Red Cross Society
  • Pakamon Chanyim National Blood Centre, Thai Red Cross Society
  • Siriporn Saneesod National Blood Centre, Thai Red Cross Society

Keywords:

Platelet, Leukodepleted pooled platelet concentrates , Leukodepleted pooled platelet concentrates with pathogen inactivation, เกล็ดเลือด, เกล็ดเลือดที่ลดเม็ดเลือดขาวด้วยวิธีการกรอง , เกล็ดเลือดที่ผ่านการยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อจุลชีพ

Abstract

Abstracts:

Introduction: The problem of microbial contamination of platelets is widespread. Currently, National Blood Centre, Thai Red Cross Society has prevented and detected microbial contamination by using bacterial cultures in all platelet units. However, this method has its limitations. The incubation period for the growth of the microorganisms should be long enough to obtain the optimal number of organisms detectable by the machine. To solve this problem, pathogen inactivation technology, a technology to inhibit the growth of microorganisms, was studied in LDPPC production. Objective: To investigate the quality of pathogen inactivation treated leukodepleted pooled platelet concentrates (LDPPC): amotosalen - UVA light treatment after 7 days of storage. Materials and Methods: A total of 120 units of whole blood were used to prepare 30 units LDPPC by the buffy coat method. The quality of LDPPC was assessed before pathogen inactivation by testing for volume, platelet count, leukocyte content, pH and swirling phenomenon. Pathogen inactivation was performed by the amotosalen - UVA light treatment method. LDPPC with PI were stored at 20-24 °C in platelet incubator and examined for their quality on day 2, day 5 and day 7 for preparation volume, platelet count, pH, swirling phenomenon and bacterial cultures. Results: Testing before pathogen inactivation treatment, volume was 314.31±9.82 mL, platelet count was 327.21±26.19×109 per bag, leukocyte content was 0.04±0.02×106 per bag, pH was 7.15±0.03, swirling phenomenon was 5+ and red blood cell was 0.03±0.01 ×106 per bag. After treatment with pathogen inactivation on day 2, volume was 289.02±9.73 mL, platelet count was 279.11±22.24×109 per bag, pH was 7.04±0.03, and swirling phenomenon was 5+. On day 5 volume was 289.02±9.73 mL, platelet count was 266.12±22.32×109 per bag, pH was 7.26±0.04, and swirling phenomenon was 5+. On day 7 volume was 289.02±9.73 ml, platelet count was 263.89±23.13×109 per bag, pH was 7.13±0.07, and swirling phenomenon was 5+. The bacterial culture test was negative at day 2, 5 and 7. Conclusion: The results of LDPPC treated with pathogen inactivation were within the standard of National Blood Centre, Thai Red Cross Society during the 7 days of storage.

บทคัดย่อ

บทนำ  การปนเปื้อนเชื้อจุลชีพในส่วนประกอบโลหิตประเภทเกล็ดเลือด เป็นปัญหาที่พบบ่อย ปัจจุบันศูนย์บริการโลหิตแห่งชาติ สภากาชาดไทย มีมาตรการในการป้องกันและตรวจสอบการปนเปื้อนของเชื้อจุลชีพ โดยใช้วิธี bacterial culture ในส่วนประกอบโลหิตประเภทเกล็ดเลือดเข้มข้นทุกถุง ซึ่งวิธีนี้ยังมีข้อจำกัด ในด้านระยะเวลาที่ใช้เพื่อการเจริญเติบโตของเชื้อจุลชีพให้มีจำนวนมากพอที่เครื่องจะสามารถตรวจวัดได้ ดังนั้นเพื่อแก้ปัญหานี้จึงทำการศึกษาโดยใช้เทคโนโลยี pathogen inactivation ซึ่งเป็นเทคโนโลยีการยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อจุลชีพในการผลิต LDPPC วัตถุประสงค์ เพื่อศึกษาถึงคุณภาพของ LDPPC ที่ผ่านการทำ pathogen inactivation ด้วยวิธี amotosalen–UVA light treatment เมื่อเก็บรักษาเป็นระยะเวลา 7 วัน วัสดุและวิธีการ  ใช้โลหิตรวมจำนวน 120 ยูนิต นำมาผลิตเป็น LDPPC จำนวน 30 ยูนิต โดยวิธี buffy coat method และนำ LDPPC ไปตรวจคุณภาพก่อนการทำ pathogen inactivation โดยวัด volume, platelet count, leukocyte content, pH และ swirling phenomenon จากนั้นนำ LDPPC ที่ผลิตได้ไปผ่านการทำ pathogen inactivation และนำไปตรวจคุณภาพในวันที่ 2, 5 และ 7 ของวันที่ผลิต โดยวัด volume, platelet count, pH, swirling phenomenon และทำการทดสอบ bacterial culture   ผลการศึกษา  การทดสอบก่อนทำ pathogen inactivation พบว่า ใน 1 ถุงของ LDPPC มีปริมาตร 314.31±9.82 มิลลิลิตร ปริมาณเกล็ดเลือด 327.21±26.19×109 เซลล์ ปริมาณเม็ดเลือดขาว 0.04±0.02×106 เซลล์ ค่า pH 7.15±0.03 ค่า swirling 5+ และปริมาณเม็ดเลือดแดง 0.03±0.01 ×106 เซลล์ การทดสอบหลังการทำ pathogen inactivation ในวันที่ 2 พบว่า LDPPC with PI มีปริมาตร 289.02±9.73 มิลลิลิตร ปริมาณเกล็ดเลือด 279.11±22.24×109 เซลล์ ค่า pH 7.04±0.03 และ swirling 5+ ในวันที่ 5 พบว่า LDPPC with PI มีปริมาตร 289.02±9.73 มิลลิลิตร ปริมาณเกล็ดเลือด 266.12±22.32×109 เซลล์ ค่า pH 7.26±0.04 และ swirling 5+ ในวันที่ 7 พบว่า LDPPC with PI มีปริมาตร 289.02±9.73 มิลลิลิตร ปริมาณเกล็ดเลือด 263.89±23.13×109 เซลล์ ค่า pH 7.13±0.07 และ swirling 5+ สำหรับผลการทดสอบ bacterial culture negative ในวันที่ 2, 5 และ 7  สรุป  การศึกษาถึงคุณภาพของ leukodepleted pooled platelet concentrates (LDPPC) ที่ผ่านการทำ pathogen inactivation ด้วยวิธี amotosalen–UVA light treatment เมื่อเก็บรักษาเป็นระยะเวลา 7 วัน พบว่าปริมาณเกล็ดเลือด ปริมาณเม็ดเลือดขาว ค่า pH swirling และผลการทดสอบ bacterial culture อยู่ในเกณฑ์มาตรฐานของศูนย์บริการโลหิตแห่งชาติตลอดระยะเวลา 7 วัน ที่ทำการศึกษา ดังนั้น การทำ pathogen inactivation ด้วยวิธี amotosalen–UVA light treatment สามารถนำมาใช้ในการผลิต LDPPC ได้

Downloads

Download data is not yet available.

References

De Korte D, Marcelis JH, Soeterboek AM. Determination of the degree of bacterial contamination of whole blood collections using an automated microbe-detection system. Transfusion. 2001;41:815-8.

De Korte D, Marcelis JH, Verhoeven AJ, Soeterboek AM. Diversion of first blood volume results in a reduction of bacterial contamination of whole blood collection. Vox Sang. 2002;83:13-6.

Soeterboek AM, Welle FHM, Marcelis JH. Sterility testing of blood products in 1994/1995 by three cooperating blood banks in The Netherlands. Vox Sang. 1997;72:61-2.

Kleinman S, Reed W, Stassinopoulos A. A patient oriented risk benefit analysis of pathogen-inactivated blood components: application to apheresis platelets in the United States. Transfusion. 2013;53:1603-18.

McDonald CP. Bacterial risk reduction though by improved donor arm disinfection, diversion and bacterial screening. Transfus Med. 2006;16:381-96.

Wagner SJ. Transfusion transmitted bacterial infection: risks sources and interventions. Vox Sang. 2004;86:157-63.

Braine HG, Kickler TS, Charache P. Bacterial sepsis secondary to platelet transfusion: an adverse effect of extended storage at room temperature. Transfusion. 1986;26:391-3.

Mertens G, Muylle L, Goossens H. Possible implication of sterile connecting device in contamination of pooled platelet concentrates. Transfus Sci. 1997;18:387-92.

Blajchman MA. Bacterial contamination and proliferation during the storage of cellular blood products. Vox Sang. 1998;74:155-9.

Goldman M, Blajchman MA. Bacterial contamination. In: Popovsky M, editor. Transfusion reaction. 2nd ed. Bethesda, MD: Association for the Advancement of Blood & Biotherapies; 2001. p. 129-54.

Breacher ME, Holland PV, Pineda AA, Tegtmier GE, Yomtovian R. Growth of bacteria in inoculated platelets implications for bacteria detection and extension of platelet storage. Transfusion. 2000;40:1308-12.

Blajchman MA, Beckers EAM, Dickmeiss E, Bacterial detection of platelets: current problems and possible resolutions. Transfus Med Rev.2005;19:259-72.

Bryant BJ, Klein HG. Pathogen inactivation: the definitive safeguard for the blood supply. Arch Pathol Lab Med. 2007;131:719-33.

Politis C, Kavallierou L, Hantziara S. Quality and safety of fresh frozen plasma inactivated and leukoreduced with the Theraflex methylene blue system including the Blueflex filter:5 years of experience.Vox Sang. 2007;92:319-26.

Solheim BG, Seghatchain J. Update on pathogen reduction technology for therapeutic plasma: an overview. Transfus Apher Sci. 2006;35:83-90.

Amphonmaha P, Nathalang O. Pathogen inactivation in blood donor plasma. J Hematol Transfus Med. 2012;22:59-63.

Crowder LA, Steele WR, Stramer SL. Infections disease screening. In: Cohn CS, Delaney M, Johnson ST, Katz LM, editors. Technical manual. 20th ed. Bethesda: Association for the Advancement of Blood & Biotherapies; 2020. p. 173-227.

Uchida S, Tadokoro K, Takahashi M, Yahagi H, Satake M, Juji T. Analysis of 66 patients definitive with transfusion-associated graft versus host disease and the effect of universal irradiation of blood. Transfus Med. 2013;23:416-22.

Ohto H, Anderson KC. Survey of transfusion-associated graft versus host disease in immunocompetent recipients. Transfus Med. 1996;10:31-43.

Council of Europe. Guide to the preparation use and quality assurance of blood components. 17th ed. European Directorate for the Quality of medicines and Health Care of the Council of Europe; 2013.

Council of Europe. Guide to the preparation use and quality assurance of blood components. 19thed. European Directorate for the Quality of medicines and Health Care of the Council of Europe; 2017.

New H. Joint United Kingdom (UK) Blood Transfusion and Tissue Transplantation Services Professional Advisory Committee. Validation of plasma and platelet pathogen inactivation. Avaliable from: https://www.transfusionguidelines.org/document-library/documents/validation-of-plasma-and-platelet-pathogen-inactivation-march-2019-pdf.

Canadian Blood Services. pathogen reduced platelets (online). 2022, Avaliable from: https://professionaleducation.blood.ca/en/transfusion/clinical-guide/pathogen-reduced-platelets (10 November 2023).

Downloads

Published

2023-12-21

Issue

Section

นิพนธ์ต้นฉบับ (Original article)