Comparison of ABO antibody titers using the conventional tube technique and the automated column agglutination technique in ABO-incompatible kidney transplant

Authors

  • Sasanun Traiwongpaisarn Department of Laboratory Medicine, Faculty of Medicine, Chulalongkorn University
  • Pemika Kongsangbut Transfusion Medicine Unit, King Chulalongkorn Memorial Hospital, Thai Red Cross Society
  • Rattaporn Vichitratchaneekorn Department of Laboratory Medicine, Faculty of Medicine, Chulalongkorn University
  • Phandee Watanaboonyongcharoen Department of Laboratory Medicine, Faculty of Medicine, Chulalongkorn University

Keywords:

ABO incompatible kidney transplant, Automated column agglutination technique, Conventional tube technique, การปลูกถ่ายไตข้ามหมู่เลือด, ความแรงของแอนติบอดีหมู่เลือดเอบีโอ, วิธีคอลัมน์แอกกลูติเนชั่น, วิธีหลอดทดลองมาตรฐาน, ABO antibody titration

Abstract

Abstract:

Introduction: The ABO antibody titration test is an essential part of the management and evaluation of patients with ABO-incompatible kidney transplants. High ABO antibody titers can cause hyperacute graft rejection in ABO-incompatible kidney transplantations and cause poor graft outcomes. Nowadays, conventional tube technique (CTT) is a standard method for measuring antibody titer; however, it is labor intensive, difficult to standardize and subjective in interpretation. The automated column agglutination technique (CAT) has been introduced to test antibody titers. Not only produces a stable, reproducible result and eliminates inter-reader variability, but also decreases manual workloads for the fast, accurate, and precise test result for clinicians.  Objective: To compare the ABO antibody titers at room temperature and IAT phase between CTT and automated CAT (Ortho Vision Max) by using concordance, correlation, and agreement tests. We plan to apply an antibody titration method using an automated CAT instead of a CTT in routine blood bank laboratory tests. Materials and Methods: Altogether, 120 plasma samples from patients admitted for ABO incompatible kidney transplants consisted of 40 samples for each blood group A, B, and O. Antibody titrations were performed using CTT and automated CAT simultaneously. Results: The total concordance rate of CTT and automated CAT at room temperature and IAT phase was 76.25% and the discordance rate was 23.75%. The high titer and low titer results from CTT almost corresponded to automated CAT. There is no statistical significance in the comparison of mean difference titers between the two tests. Most of the results using automated CAT were higher than the CTT. The correlation between two tests using the Spearman rho correlation coefficient is 0.81(p-value < 0.01). The agreement has variation results from substantial to near-perfect agreement (Cohen’s kappa = 0.752-0.870).  Conclusion: This study demonstrated that the ABO antibody titers measured by CTT and automated CAT had a high concordance rate, a highly significant correlation, and good agreement, indicating reliable results. Therefore, automated CAT can be implemented to perform antibody titration in routine laboratory tests.

บทคัดย่อ

บทนำ การตรวจ antibody titration มีความสำคัญต่อการประเมินผู้ป่วยที่ปลูกถ่ายไตข้ามหมู่เลือดเพราะค่า antibody titer ที่สูงจะทำให้เกิดภาวะ hyperacute graft rejection ได้หลังการปลูกถ่าย ปัจจุบันการทำ antibody titration สามารถทำได้โดยวิธีหลอดทดลองมาตรฐาน conventional tube test (CTT) ที่ต้องอาศัยความชำนาญ ประสบการณ์และความแม่นยำของผู้ทำ จึงเริ่มมีการนำเครื่องตรวจวิเคราะห์อัตโนมัติที่ใช้หลักการ column agglutination test (CAT) มาใช้ในการหา antibody titer เพื่อลดระยะเวลาในการทดสอบ ได้ค่าที่ถูกต้อง แน่นอนและแม่นยำ   วัตถุประสงค์   เพื่อศึกษาเปรียบเทียบผล antibody titer ที่ room temperature และ indirect antiglobulin test (IAT) phase ระหว่างวิธีหลอดทดลองมาตรฐาน และ automated column agglutination เพื่อหา concordance, median difference, correlation และ agreement เพื่อเป็นแนวทางในการนำเครื่องตรวจอัตโนมัติด้วยวิธี CAT มาใช้ในงานประจำของธนาคารเลือด   วัสดุและวิธีการ  ตัวอย่างพลาสมาจำนวน 120 ตัวอย่างจากผู้ป่วยปลูกถ่ายไตข้ามหมู่เลือด ประกอบด้วยหมู่เลือด A, B และ O อย่างละ 40 ตัวอย่าง มาทดสอบหาค่า antibody titer ของ anti-A และ anti-B ทั้งที่ room temperature และ IAT phase ด้วยวิธี CTT และวิธี automated CAT   ผลการศึกษา  ผล concordance ที่ให้ผลไม่แตกต่าง ในช่วงไม่เกิน 1 titer เท่ากับ 76.25% และ discordance เท่ากับ 23.75%  ผลการตรวจ high titer และ low titer antibody จาก CTT และ automated CAT ให้ผลไปด้วยกันเป็นส่วนมาก ผล median difference ส่วนมากไม่มีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ และโดยรวมพบว่าการตรวจด้วยวิธี automated CAT จะมีค่า titer ที่เท่ากับหรือสูงกว่า titer จากการตรวจ CTT   ผล correlation ได้ค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ของ antibody titer โดยรวมเท่ากับ 0.81 (p-value < 0.01) มี correlation สูงและผล agreement มีค่าหลากหลายตั้งแต่ต่ำจนถึงสูงมาก แต่ทุกข้อมูลมีความสัมพันธ์กันเชิงบวก  สรุป งานวิจัยนี้เป็นการทดสอบเปรียบเทียบการทำ ABO antibody titer ด้วยวิธี CTT กับวิธี automated CAT ในตัวอย่างผู้ป่วยปลูกถ่ายไตที่หมู่เลือดไม่เข้ากัน พบว่าข้อมูลส่วนมากมีความสัมพันธ์สอดคล้องไปด้วยกันจากการตรวจทั้งสองวิธี บ่งบอกถึงความน่าเชื่อถือในการใช้วิธี automated CAT แทนวิธี CTT ในการทำ antibody titration  

Downloads

Download data is not yet available.

References

Iwami D, Shinohara N. Anti-ABO antibody elimination: Pre- and post-ABO-incompatible kidney transplantation. Int J Immunogenet. 2019;22:117–29.

Chung BH, Lee JY, Kang SH, Sun IO, Choi SR, Park HS, et al. Comparison of clinical outcome between high and low baseline Anti-ABO antibody titers in ABO-incompatible kidney transplantation. Renal Failure. 2011;33:150–8.

Avihingsanon Y, Townamchai N, Praditpornsilpa K, Tiranathanagul K, Susantitaphong P, Sirichindakul B, et al. Living-donor kidney transplantation across ABO barriers: the first case in Thailand. Asian Biomedicine. 2009;3:525-9.

Kobayashi T, Saito K. A series of surveys on anti-A / B antibody assay by Japanese ABO-incompatible transplantation committee. Xenotransplantation. 2006;13:136-40.

Lim Y, Kang S. Standardization of ABO antibody titer measurement in laboratories in Korea. Ann Lab Med. 2014;34:456-62.

Kang S, Lim Y, Baik S. Comparison of ABO antibody titers on the basis of the antibody detection method used. Ann Lab Med. 2014;34:300-6.

Roback JD, Coombs MR, Grossman BJ, Hillyer CD. Method 3-7. Antibody titration procedure. Technical manual. 16th ed. Bethesda, MD: American Association of Blood Banks; 2008. p. 909-11.

Tobian A, Shirey R, King K. ABO antibody titer monitoring for incompatible renal transplantation. Asian J Transfus Sci. 2011;51:454-7.

Onpuns S, Lorucharoen N, Chongpison Y. Comparative study of ABO antibody titers using conventional tube technique and automated column agglutination technique. J Hematol Transfus Med. 2020;30:147-55.

Gooch A, Parker J, Wray J, Qureshi H. Guideline for blood grouping and antibody testing . J Transfus Med. 2007;17:252–62.

Suwanwootichai P. Comparison of IgG antibody titers using conventional tube technique and automated column agglutination test. J Hematol Transfus Med. 2020;30:353-60.

Matsuura H, Akatsuka Y, Matsuno T, Sugiura Y, Arakawa S, Oikawa S, et al. Comparison of the tube and column agglutination technique for anti-A/-B antibody titration in healthy individuals. Vox Sang. 2018;113: 787-94.

Aubuchon J, de Wildt-Eggen J, Dumont L. Reducing the variation in performance of antibody titrations. Vox Sang. 2008;95:57-65.

Nam M, Hur M, Lee H, Kim H, Park M, Moon HW, et al. Comparison between tube test and automated column agglutination technology on VISION Max for anti-A/B isoagglutinin titres: a multidimensional analysis. Vox Sang. 2022;117:399-407.

Park ES, Jo KI, Shin JW, Park R, Choi TY, Bang HI, et al. Comparison of total and IgG ABO antibody titers in healthy individuals using tube and column agglutination techniques. Ann Lab Med. 2014;34:223-9.

Bhangale A, Pathak A, Pawar S, Jeloka T. Comparison of antibody titers using conventional tube technique versus column agglutination technique in ABO blood group incompatible renal transplant. Asian J Transfus Sci. 2017;11:131-4.

Mazda T, Yabe R, Nathalang O, Thammavong T, Tadokoro K. Differences in ABO antibody levels among blood donors: A comparison between past and present Japanese, Laotian, and Thai populations. Immunohematology. 2007;23:38–41.

Nayak S, Makroo RN, Prakash B, Chandra T, Agrawal S, Chowdhry M, et al. Comparative evaluation of five different methods of Anti-ABO antibody titration: an aid for ABO-incompatible organ transplants. Ther Apher Dial. 2019;23:86-91.

Finck R, Lui-Deguzman C, Teng SM, Davis R, Yuan S. Comparison of a gel microcolumn assay with the conventional tube test for red blood cell alloantibody titration. Transfus Apher Sci. 2013;53:811–5.

Kumlien G, Wilpert J, Safwenberg J, Tyden G. Comparing the tube and gel techniques for ABO antibody titration, as performed in three European centers. Transplantation. 2007;84:17–9.

Cho CH, Kim HN, Yun SG, Choi GR, Choi JY, Kim JS, et al. Evaluation of ABO antibody titration using tube and column agglutination techniques. Lab Med Online. 2011;1:57–63.

Okuno T, Kondelis N. Evaluation of dithiothreitol (DTT) for the inactivation of IgM antibodies. J Clin Pathol. 1978;31:1152-5.

Knight RC. Measuring IgG anti-A/B titres using dithiothreitol (DTT). J Clin Pathol. 1978;31:283-7.

Ranjan S, Pandey P, Setya D, Kumari S. A prospective, observational study to assess effect of DTT treatment on ABO isoagglutinin titers in O blood group donors. Int J Blood Res Disord. 2022;9.083. doi: 10.23937/2469-5696/1410086.

Blagg L. Sulfhydryl treatment of serum or plasma for the reduction of IgM antibodies. Immunohematology. 2018;34:135–9.

Perry H, Bovin N, Henry S. A standardized kodecyte method to quantify ABO antibodies in undiluted plasma of patients before ABO-incompatible kidney transplantation. Transfusion. 2019;59:2131–40.

Downloads

Published

2023-06-22

Issue

Section

นิพนธ์ต้นฉบับ (Original article)