ความถี่ของจีโนไทป์ HPA-1 ถึง HPA-11, HPA-13, -14, -15 และ HPA-17 ในผู้บริจาคโลหิตคนไทย
Keywords:
Human platelet antigen, HPA, Genotype frequencies, Thai blood donorsAbstract
บทคัดย่อ
บทนำ Human platelet antigen (HPA) system มีความสำคัญโดยเฉพาะการเกิดภาวะ fetal-neonatal alloimmune thrombocytopenia, platelet transfusion refractoriness และ post-transfusion purpura การตรวจ จีโนไทป์ของ HPA จะเป็นประโยชน์ในการวินิจฉัยและการรักษาโรค วัตถุประสงค์ เพื่อศึกษาข้อมูลย้อนหลังของความถี่จีโนไทป์ HPA-1 ถึง HPA-11, HPA-13 ถึง HPA-15 และ HPA-17 ในผู้บริจาคเลือดคนไทย วัสดุและวิธีการ ศึกษาข้อมูลของความถี่จีโนไทป์ HPA-1, -2, -4, -5 และ HPA-6 จำนวน 10,510 รายและ ตรวจจีโนไทป์ HPA-3, -7, -8, -9, -10, -11, -13, -14, -15 และ HPA-17 เพิ่มเติมในผู้บริจาคเลือดจำนวน 2,009 ราย ด้วยวิธี real-time PCR ในผู้บริจาคเลือด และเปรียบเทียบความถี่จีโนไทป์กับกลุ่มประชากรอื่นที่เคยมีรายงานไว้ ผลการศึกษา จากผลการตรวจ พบว่า genotype frequencies ของ HPA ทั้ง 7 ระบบ คือ HPA-1a และ HPA-1b เท่ากับ 0.981 และ 0.019, HPA-2a และ HPA-2b เท่ากับ 0.953 และ 0.047, HPA-3a และ HPA-3b เท่ากับ 0.564 และ 0.436, HPA-4a และ HPA-4b เท่ากับ 0.999 และ 0.001, HPA-5a และ HPA-5b เท่ากับ 0.967 และ 0.033, HPA-6a และ HPA-6b เท่ากับ 0.985 และ 0.015 และ HPA-15a และ HPA-15b เท่ากับ 0.530 และ 0.470 ตามลำดับ พบว่า ส่วนใหญ่เป็น จีโนไทป์แบบ homozygous aa รองลงมาคือ heterozygous ab ส่วน homozygous bb พบได้น้อย ยังไม่พบ HPA-4b4b แต่พบ HPA-6b6b ได้ 1 ราย อัตราความชุกของจีโนไทป์ HPA-1 ถึง HPA-6 และ HPA-15 ในการศึกษานี้ใกล้เคียงกับรายงานก่อนหน้าในผู้บริจาคเลือดคนไทยแต่พบความแตกต่างกลุ่มประชากรเอเชียอื่นที่มีรายงานไว้ สรุป การศึกษานี้ได้รายงานความถี่ของจีโนไทป์ HPA-1 ถึง HPA-6 และ HPA-15 รวมทั้ง HPA-7 ถึง HPA-11, HPA-13, HPA-14 และ HPA-17 ในผู้บริจาคเลือดคนไทย ซึ่งเป็นข้อมูลที่สามารถนำไปใช้ในการจัดหาเกล็ดเลือดจากผู้บริจาคเลือดที่เป็น HPA-matched ให้กับผู้ป่วยที่สร้างแอนติบอดีต่อเกล็ดเลือด อีกทั้งใช้ในการเตรียมเซลล์มาตรฐานที่เหมาะสมในการตรวจแยกชนิดของแอนติบอดี เพื่อช่วยเพิ่มความปลอดภัยของการให้เกล็ดเลือดกับผู้ป่วย
Abstract:
Introduction: Human platelet antigen (HPA) systems are involved in fetal-neonatal thrombocytopenia, platelet transfusion refractoriness, and post-transfusion purpura. The HPA genotyping is beneficial in the diagnosis and treatment. Objective: This retrospective study aimed to determine genotype frequencies of HPA-1 to HPA-11, HPA-13 to HPA-15 and HPA-17 in Thai blood donors. Materials and Methods: Totally, 10,510 donor samples were genotyped for HPA-1, -2, -4, 5, and HPA-6, and extended genotypes by real time-PCR. Consequently, 2,009 samples were genotyped for HPA-3, -7, -8, -9, -10, -11, -13, -14,-15 and HPA-17. The frequencies were compared with other populations previously reported. Results: Among blood donors, the frequencies of HPA-1a and HPA-1b were 0.981 and 0.019; HPA-2a and HPA-2b were 0.953 and 0.047; HPA-3a and HPA-3b were 0.564 and 0.436, respectively. The frequencies of HPA-4a and HPA-4b were 0.999 and 0.001; HPA-5a and HPA-5b were 0.967 and 0.033 and HPA-6a and HPA-6b were 0.985 and 0.015. For the HPA extended genotypes, the most common was homozygous aa, followed by heterozygous ab and homozygous bb was rare. The HPA-4b4b was not found while, only one donor with HPA-6b6b was observed. The prevalence rates of HPA-1 to HPA-6, and HPA-15 were similar to a related study in Thai blood donors and showed significantly different from other Asian populations previously reported. Conclusion: This study showed genotype frequencies of HPA-1 to HPA-6, and HPA-15, and extended genotypes in Thai blood donors. This data is useful to provide HPA-matched platelet donors for patients with HPA antibodies. In addition, the data file could provide appropriate panel cells not only to identify antibody specificity but also to increase transfusion safety.
Downloads
References
2. Rosenberg N, Zivelin A, Chetrit A, Dardik R, Kornbrot N, Freimark D, et al. Effects of platelet membrane glycoprotein polymorphisms on the risk of myocardial infarction in young males. Isr Med Assoc J. 2002;4:411-4.
3. Tamatani T, Takamaru N, Ohe G, Nakagawa T, Kurio N, Kudou K, et al., The clinicopathologic roles of SOX2 and Oct4 expressions in stage 1 and 2 oral squamous cell carcinoma. AACR. 2018;78(13 Suppl):Abstract nr 3061.
4. Hauck-Dlimi B, Hammon K, Eckstein R, Ott S, Zimmermann R, Dengler T, et al. Human platelet antigen genotypes in Turkish and Caucasian blood donors in Germany. Tissue Antigens. 2012;80: 214-8.
5. Fung MK, Eder AF, Spitalnik SL, Westhoff CM. Technical manual.19th ed. Betheda, MD: American Association of Blood Banks;2017.
6. Srisuddee A, Kupatawintu P, Roekchai C, Inorn K, Phiancharoen S, Nathalang O, et al. A study of platelet antibody detection in patients at the National Blood Centre, Thai Red Cross Society. J Hematol Transfus Med. 2016;26:183-9.
7. Heikal NM, Smock KJ. Laboratory testing for platelet antibodies. Am J Hematol. 2013;88:818-21.
8. Hayashi T, Hirayama F. Advances in alloimmune thrombocytopenia: perspectives on current concepts of human platelet antigens, antibody detection strategies, and genotyping. Blood Transfus. 2015;13:380-90.
9. Seo DH, Park SS, Kim DW, Furihata K, Ueno I, Han KS. Gene frequencies of eight human platelet-specific antigens in Koreans. Transfus Med. 1998;8:129-32.
10. Kupatawintu P, Nathalang O, O-Charoen R, Patmasiriwat P. Gene frequencies of the HPA-1 to 6 and Gov human platelet antigens in Thai blood donors. Immunohematology. 2005;21:5-9.
11. Kengkate M, Butthep P, Kupatawintu P, Khanunthong S, Chantratita W, Nathalang O. Genotyping of HPA-1 to -7 and -15 in the Thai population using multiplex PCR. Transfus Med. 2012;22:272–6.
12. Kengkate M, Butthep P, Kupatawintu P, Srisuddee A, Chantratita W, Nathalang O. Comparison of a simple-probe real-time PCR and multiplex PCR techniques for HPA-1 to HPA-6 and HPA-15 genotyping. J Clin Lab Anal. 2015;29:94–9.
13. Romphruk AV, Akahat J, Srivanichrak P, Puapairoj C, Romphruk A, Leelayuwat C. Genotyping of human platelet antigens in ethnic Northeastern Thais by the polymerase chain reaction-sequence specific primer technique. J Med Assoc Thai. 2000;83:1333-9.
14. Jia-Yi T, Lay-Hoong L, Veera SN. Genetic polymorphisms of human platelet antigens-1 to -6, and -15 in the Malaysian population. Blood Transfus. 2012;10:368-76
15. Halle L, Bach KH, Martageix C, Bianchi F, Lê T Kim T, Morel-Kopp MC, et al. Eleven human platelet systems studied in the Vietnamese and Ma'ohis Polynesian populations. Tissue Antigens. 2004;63:34-40.
16. Seo DH, Park SS, Kim DW, Furihata K, Ueno I, Han K S. Gene frequencies of eight human platelet-specific antigens in Koreans. Transfus Med. 1998;8:129-32.
17. Tanaka S, Ohnoki S, Shibata H, Okubo Y, Yamaguchi H, Shibata Y. Gene Frequencies of human platelet antigen on glycoprotein IIIa in Japanese. Transfusion. 1996;36:813-7.
18. Feng ML, Liu DZ, Shen W, Guo ZH, Zhang X, Du KM, et al. Establishment of an HPA-1- to -16-typed platelet donor registry in China. Transfus Med. 2006;16:369-74.
19. Shih MC, Liu TC, Lin IL, Lin SF, Chen CM, Chang JG. Gene frequencies of the HPA-1 to HPA-13, Oe and Gov platelet antigen alleles in Taiwanese, Indonesian, Filipino and Thai populations. Int J Mol Med. 2003;12:609-14.
20. Kekomaki R. Use of HPA- and HLA-matched platelets in alloimmunized patients. Vox Sang. 1998;74(suppl 2):259-63.
21. Verran J, Gray D, Bennett J, Lown JAG, Erber WN. HPA-1, 3, 5 genotyping to establish a typed platelet donor panel. Pathology. 2000;32:27-35.
22. Tomoya H, Ryota A, Hiroyuki I, Yoshihiko T, Yoshihiro F, Yoshihiro T, et al. Frequency of allotype “b” in human platelet antigen 1 to 29 systems among blood donors in Japan estimated using high-resolution melt analysis. Transfusion. 2020, doi: 10.1111/trf.15967.
23. Uenaka M, Morizane M, Tanimura K, Deguchi M, Ebina Y, Hashimoto M, et al. Neonatal alloimmune thrombocytopenia: A report of four cases. Kobe J Med Sci. 2019;64:E197-99.
24. Morel-Kopp MC, Blanchard B, Kiefel V, Joly C, Mueller-Eckhardt C, Kaplan C. Anti-HPA-4b (anti-Yuk(a)) neonatal alloimmune thrombocytopenia: first report in a Caucasian family. Transfus Med. 1992;2:213-16.
25. Mangerona CM, Garcia FB, Moraes-Souza H. Frequency of human platelet antigens (HPA)-1, -2, -5 and -15 in Brazilian blood donors and establishment of a panel of HPA-typed donors. Transfusion Med. 2015; 25:189-94.
26. Kjaer M, Bertrand G, Bakchoul T, Massey E, Baker JM, Lieberman L, et al. Maternal HPA-1a antibody level and its role in predicting the severity of fetal/neonatal alloimmune Thrombocytopenia: a systematic review. Vox Sang. 2019;114:79-94.
27. Lucas GF, Pittman SJ, Davies S, Solanki T, Brüggemann K. Post-transfusion purpura (PTP) associated with anti-HPA-1a, anti-HPA-2b and anti-HPA-3a antibodies. Transfus Med. 1997;7:295-9.
28. Tao S, Chen S, Hong X, He J, Zhu F. Novel method for simultaneously detecting HPA and HLA antibodies using Luminex microbeads. J Transl Med. 2019;17:249.
29. Tazzari PL, Ricci F, Tassi C, Bontadini A, Fruet F, Conte R. Alloimmunization against human platelet antigen 2 (HPA2) in a series of multitransfused b-thalassemia patients. Haematologica. 1998;83:765-6.
30. Porta R, Serrano P, Paltrinieri A, Ristic G, Canals C, Lozano M. Neonatal alloimmune thrombocytopenia due to anti-HPA 5a in a HPA-5a homozygous neonate. Transfus Apher Sci. 2020 DOI:https://doi.org/10.1016/j.transci.2020.102880.
